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根粒菌によって排泄されるnod因子は、非還元末端で脂肪酸に関連するキチンオリゴマーの骨格で構成されるシグナル分子です。NOD因子構造の修正は、根圏の安定性とその生物活性に影響します。NOD因子におけるN-アセチル基の機能をテストするために、sinorhizobium melilotiからのnodsm-IV(C16:2、S)は、in vitroで酵素的にn-deacetylated coltotrichum lindemuthianの精製キチンデアセチラーゼで酵素的にn-deacetylatedでした。部分的かつ完全に脱アセチル化された誘導体のファミリーが生成され、精製されました。質量分析によって特定された最も豊富な化学構造は、GLCN(C16:2)-GLCNAC-GLCNH2-GLCNAC(OH)(S)、GLCN(C16,2)-GLCNAC-GLCNH2-GLCNH2(OH)(S)、およびGLCNでした。(c16:2)-glcnh2-glcnh2-glcnh2(oh)(s)。NODSM-IV(C16:2、S)とは対照的に、精製されたN-デアセチル化誘導体は、メディカゴサティバの根圏で安定しており、n-アセチル基がグリコシルヒドロラーゼの炭水化物要因の炭水化物部分を宿主のグリコシルヒドロラーゼにアクセスできることを示しています。植物。N-デアセチル化された誘導体は、根の毛の変形を誘導する際に低いレベルの活性のみを示しました。さらに、N-デアセチル化された分子は、M。SativaRootsによるNOD因子分解を刺激することができませんでした。これらのデータは、NOD因子のN-アセチル基が生物活性に必要であることを示しています。
根粒菌によって排泄されるnod因子は、非還元末端で脂肪酸に関連するキチンオリゴマーの骨格で構成されるシグナル分子です。NOD因子構造の修正は、根圏の安定性とその生物活性に影響します。NOD因子におけるN-アセチル基の機能をテストするために、sinorhizobium melilotiからのnodsm-IV(C16:2、S)は、in vitroで酵素的にn-deacetylated coltotrichum lindemuthianの精製キチンデアセチラーゼで酵素的にn-deacetylatedでした。部分的かつ完全に脱アセチル化された誘導体のファミリーが生成され、精製されました。質量分析によって特定された最も豊富な化学構造は、GLCN(C16:2)-GLCNAC-GLCNH2-GLCNAC(OH)(S)、GLCN(C16,2)-GLCNAC-GLCNH2-GLCNH2(OH)(S)、およびGLCNでした。(c16:2)-glcnh2-glcnh2-glcnh2(oh)(s)。NODSM-IV(C16:2、S)とは対照的に、精製されたN-デアセチル化誘導体は、メディカゴサティバの根圏で安定しており、n-アセチル基がグリコシルヒドロラーゼの炭水化物要因の炭水化物部分を宿主のグリコシルヒドロラーゼにアクセスできることを示しています。植物。N-デアセチル化された誘導体は、根の毛の変形を誘導する際に低いレベルの活性のみを示しました。さらに、N-デアセチル化された分子は、M。SativaRootsによるNOD因子分解を刺激することができませんでした。これらのデータは、NOD因子のN-アセチル基が生物活性に必要であることを示しています。
Nod factors excreted by rhizobia are signal molecules that consist of a chitin oligomer backbone linked with a fatty acid at the nonreducing end. Modifications of the Nod factor structures influence their stability in the rhizosphere and their biological activity. To test the function of N-acetyl groups in Nod factors, NodSm-IV(C16:2,S) from Sinorhizobium meliloti was enzymatically N-deacetylated in vitro with purified chitin deacetylase from Colletotrichum lindemuthianum. A family of partially and completely deacetylated derivatives was produced and purified. The most abundant chemical structures identified by mass spectrometry were GlcN(C16:2)-GlcNAc-GlcNH2-GlcNAc(OH)(S), GlcN(C16,2)-GlcNAc-GlcNH2-GlcNH2(OH)(S), and GlcN(C16:2)-GlcNH2-GlcNH2-GlcNH2(OH)(S). In contrast to NodSm-IV(C16:2,S), the purified N-deacetylated derivatives were stable in the rhizosphere of Medicago sativa, indicating that the N-acetyl groups make the carbohydrate moiety of Nod factors accessible for glycosyl hydrolases of the host plant. The N-deacetylated derivatives displayed only a low level of activity in inducing root hair deformation. Furthermore, the N-deacetylated molecules were not able to stimulate Nod factor degradation by M. sativa roots, a response elicited by active Nod factors. These data show that N-acetyl groups of Nod factors are required for biological activity.
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