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Transfusion2000Jun01Vol.40issue(6)

HPC生存率測定:トリパンブルー対アクリジンオレンジとヨウ化プロピジウム

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文献タイプ:
  • Comparative Study
  • Journal Article
概要
Abstract

背景:HPCの生存率を迅速に決定するための信頼できる検証済みの方法は、臨床細胞工学に不可欠です。 研究の設計と方法:アクリジンオレンジとヨウ化プロピジウム(AO/PI)を使用した蛍光細胞生存率アッセイを、現在の標準であるTrypan Blue(TB)除外と比較しました。ダークフィールド蛍光顕微鏡下でAO/Piで染色された生存細胞は緑色で緑色に染まっていますが、生存不可の細胞はオレンジ色に蛍光を発します。新鮮な骨骨髄と熱で殺された骨髄の混合物を調製し、両方のアッセイの評価のための生存率標準として使用しました。CFU-GMの周波数は、各標本に対して決定されました。 結果:AO/PIで測定された細胞生存率は非常に線形であり、生存可能な細胞の0〜100%と0.9921の回帰係数(R(2))の0〜100%に一致して測定および予測された生存率がありました。AO/PI測定の生存率の予測される視界回帰線は、95%CI内に収まりました。TBが測定した生存率の回帰係数は0.9584であり、予測された潜在性回帰線はほぼ完全に95%CIの外側にありました。TBは、特に50%以下の生存細胞の割合を過大評価していました。CFU-GM周波数は、TB(R(2)= 0.930)で測定されたものよりもAO/PI(R(2)= 0.979)で測定された細胞生存率とよりよく相関していました。 結論:AO/PI生体可能性アッセイは、TB除外による従来の生存率測定よりも優れた、迅速で、非常に線形、機能的に相関するアッセイです。

背景:HPCの生存率を迅速に決定するための信頼できる検証済みの方法は、臨床細胞工学に不可欠です。 研究の設計と方法:アクリジンオレンジとヨウ化プロピジウム(AO/PI)を使用した蛍光細胞生存率アッセイを、現在の標準であるTrypan Blue(TB)除外と比較しました。ダークフィールド蛍光顕微鏡下でAO/Piで染色された生存細胞は緑色で緑色に染まっていますが、生存不可の細胞はオレンジ色に蛍光を発します。新鮮な骨骨髄と熱で殺された骨髄の混合物を調製し、両方のアッセイの評価のための生存率標準として使用しました。CFU-GMの周波数は、各標本に対して決定されました。 結果:AO/PIで測定された細胞生存率は非常に線形であり、生存可能な細胞の0〜100%と0.9921の回帰係数(R(2))の0〜100%に一致して測定および予測された生存率がありました。AO/PI測定の生存率の予測される視界回帰線は、95%CI内に収まりました。TBが測定した生存率の回帰係数は0.9584であり、予測された潜在性回帰線はほぼ完全に95%CIの外側にありました。TBは、特に50%以下の生存細胞の割合を過大評価していました。CFU-GM周波数は、TB(R(2)= 0.930)で測定されたものよりもAO/PI(R(2)= 0.979)で測定された細胞生存率とよりよく相関していました。 結論:AO/PI生体可能性アッセイは、TB除外による従来の生存率測定よりも優れた、迅速で、非常に線形、機能的に相関するアッセイです。

BACKGROUND: A reliable, validated method for rapidly determining HPC viability is essential for clinical cell engineering. STUDY DESIGN AND METHODS: A fluorometric cell viability assay using acridine orange and propidium iodide (AO/PI) was compared to the current standard, trypan blue (TB) exclusion. Viable cells stained with AO/PI fluoresce green under darkfield fluorescence microscopy, while nonviable cells fluoresce orange. Mixtures of fresh and heat-killed bone marrow were prepared and used as viability standards for evaluation of both assays. The frequency of CFU-GM was determined for each specimen. RESULTS: Cell viability measured by AO/PI was extremely linear, with measured and predicted viability in agreement from 0 to 100 percent of the viable cells and a coefficient of regression (r(2)) of 0.9921. The predicted-viability regression line fell within the 95% CI for AO/PI-measured viability. The coefficient of regression for TB-measured viability was 0.9584, with the predicted-viability regression line almost entirely outside the 95% CI. TB overestimated the percentage of viable cells, particularly below the 50-percent level. CFU-GM frequency correlated better with cell viability measured by AO/PI (r(2) = 0.979) than with that measured by TB (r(2) = 0.930). CONCLUSIONS: The AO/PI viability assay is a rapid, highly linear, functionally correlated assay that is superior to conventional viability measurement by TB exclusion.

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