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一連のベータ-D-(1--> 3、1-> 6)結合グルカン(層状、酵母グルカン、皮膚膜、皮膚科)の非破壊構造分析は、2次元NMR分光法を使用して実施しました。異なるAGUでのH-1の相対比は、DPNとDBに関する情報を提供しました。還元端子のアルファ、およびベータアノマープロトンは、5.02から約5.03 ppm(J 3.6から約3.7 Hz)、およびそれぞれ4.42から約4.43 ppm(J 7.6から約7.9 Hz)に割り当てられましたが、1つの内部Agusとベータ(1-> 6)分岐agusのプロトンは、4.56から約4.59 ppm(J 7.6から約7.8 Hz)、4.26から約4.28 ppm(J 7.6〜約10.6 Hz)に現れました。、80度Cで6:1 Me2SO-D6-D2Oの混合溶媒で、溶媒ではスペクトルからOHピークが除去され、H-1プロトンがはっきりと表示されました。さらに、ターミナルを削減する隣のAGUでの非還元端子H-1およびH-1は、4.45から約4.46 ppm(J 7.8から約7.9 Hz)、4.51から約4.53 ppm(J 7.8 Hz)で割り当てることができます。それぞれ。層状層のDPNは33(多分散性1.12)、DBは0.07でした。ラミナランのサイドチェーンのグルコシルユニットの数は複数です。水不溶性酵母グルカンのDPNとDBはそれぞれ228と0.003でした。しかし、水溶性酵母グルカンリン酸塩とコードランのDPNは、混合溶媒中の凍結乾燥プロセスの数と水の含有量の数にそれぞれ変更されました。それらのDBは、それぞれ0.02と0として計算されました。ScleroglucanのDBは、以前に報告されたデータと比較して、0.33として正確に計算されました。さまざまなベータd-(1-> 3、1-> 6)の異なるagusにあるH-1は、異なるDBを持つリンクされたグルカンに、混合溶媒システムの化学シフトによって正確に割り当てることができます。このNMR分析は、単純で非破壊的な方法で多糖類のDPとDBを決定するために効果的に使用できます。
一連のベータ-D-(1--> 3、1-> 6)結合グルカン(層状、酵母グルカン、皮膚膜、皮膚科)の非破壊構造分析は、2次元NMR分光法を使用して実施しました。異なるAGUでのH-1の相対比は、DPNとDBに関する情報を提供しました。還元端子のアルファ、およびベータアノマープロトンは、5.02から約5.03 ppm(J 3.6から約3.7 Hz)、およびそれぞれ4.42から約4.43 ppm(J 7.6から約7.9 Hz)に割り当てられましたが、1つの内部Agusとベータ(1-> 6)分岐agusのプロトンは、4.56から約4.59 ppm(J 7.6から約7.8 Hz)、4.26から約4.28 ppm(J 7.6〜約10.6 Hz)に現れました。、80度Cで6:1 Me2SO-D6-D2Oの混合溶媒で、溶媒ではスペクトルからOHピークが除去され、H-1プロトンがはっきりと表示されました。さらに、ターミナルを削減する隣のAGUでの非還元端子H-1およびH-1は、4.45から約4.46 ppm(J 7.8から約7.9 Hz)、4.51から約4.53 ppm(J 7.8 Hz)で割り当てることができます。それぞれ。層状層のDPNは33(多分散性1.12)、DBは0.07でした。ラミナランのサイドチェーンのグルコシルユニットの数は複数です。水不溶性酵母グルカンのDPNとDBはそれぞれ228と0.003でした。しかし、水溶性酵母グルカンリン酸塩とコードランのDPNは、混合溶媒中の凍結乾燥プロセスの数と水の含有量の数にそれぞれ変更されました。それらのDBは、それぞれ0.02と0として計算されました。ScleroglucanのDBは、以前に報告されたデータと比較して、0.33として正確に計算されました。さまざまなベータd-(1-> 3、1-> 6)の異なるagusにあるH-1は、異なるDBを持つリンクされたグルカンに、混合溶媒システムの化学シフトによって正確に割り当てることができます。このNMR分析は、単純で非破壊的な方法で多糖類のDPとDBを決定するために効果的に使用できます。
Nondestructive structural analysis of a series of beta-D-(1 --> 3, 1 --> 6)-linked glucans (laminaran, curdlan, yeast glucan, scleroglucan, etc.) was performed using two-dimensional NMR spectroscopy. The relative ratios of H-1 at different AGUs provided the information about DPn and DB. The alpha-, and beta-anomeric protons on reducing terminals were assigned at 5.02 to approximately 5.03 ppm (J 3.6 to approximately 3.7 Hz), and 4.42 to approximately 4.43 ppm (J 7.6 to approximately 7.9 Hz), respectively, whereas the H-1 protons of internal AGUs and beta-(1 --> 6)-branched AGUs appeared at 4.56 to approximately 4.59 ppm (J 7.6 to approximately 7.8 Hz), and 4.26 to approximately 4.28 ppm (J 7.6 to approximately 10.6 Hz), respectively, in a mixed solvent of 6:1 Me2SO-d6-D2O at 80 degrees C. In the solvent, the OH peaks were eliminated from the spectra allowing the H-1 protons to appear clearly. In addition, the nonreducing terminal H-1 and H-1 at the AGU next to reducing terminal could be assigned at 4.45 to approximately 4.46 ppm (J 7.8 to approximately 7.9 Hz), and 4.51 to approximately 4.53 ppm (J 7.8 Hz), respectively. The DPn of the laminaran was 33 (polydispersity 1.12) and the DB was 0.07. The number of glucosyl units in the side chain of laminaran is more than one. The DPn and DB of the water-insoluble yeast glucan were 228 and 0.003, respectively. However the DPn of water soluble yeast glucan phosphate and curdlan was changed upon the number of freeze-drying processes and the content of water in the mixed solvent, respectively. And the DB of those were calculated as 0.02 and 0, respectively. The DB of scleroglucan was precisely calculated as 0.33, compared with the previously reported data. The H-1s at different AGUs of the various beta-D-(1 --> 3, 1 --> 6)-linked glucans having different DB can be exactly assigned by their chemical shifts in the mixed solvent system. This NMR analysis can be effectively used to determine the DP and DB of polysaccharides in a simple and non-destructive manner.
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