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ランゲルハンス細胞（LC）は、表皮と局所リンパ節の間を移動して抗原を提示します。この移動パターンには、細胞表面分子の変化するレパートリーの発現が必要です。この作業では、LCSでの接着分子CD 11/CD 18およびCD 58の発現を調査しました。ヒトの表皮細胞懸濁液は、FCでコーティングされたヒツジの赤血球でFC受容体がパンするFC受容体パンを含む2段階の技術を使用して、LCS（平均濃縮75％）で濃縮されました。実験ごとに得られた細胞の数は750,000（極端280,000-1,800,000）であり、次の抗体は、培養で48時間後に新鮮な懸濁液および/または48時間後にテストされました：BB3（抗シログロブリン陰性コントロールIgG2A）、OKT6（抗CD1A、Ortho）、Anti HLA-DR（Becton-Dickinson）、MHM 24（Anti CD 11a、白血球タイピングワークショップN（0）3）、MO1および44（抗CD 11B、白血球タイピングワークショップN（0）3）、抗CD 11C（免疫テクノロジー）、60.3およびMHM 23（抗CD 18、白血球タイピングワークショップN（0））2）、TS2/9.1.1（Anti CD 58、白血球タイピングワークショップn（0）3）。CD 11サブユニットのうち、CD 11Cのみが新鮮な懸濁液で発現したが、CD 18よりも弱く、培養で姿を消したことがわかりました。CD 58は新鮮な懸濁液では検出されませんでしたが、2日間の培養後に登場し、以前の研究を確認しました。したがって、LCは、培養前に組織マクロファージ（CD 18およびCD 11C）と同様の細胞表面特性を示します。培養後のCD 58の発現は、末梢リンパ節における抗原提示中のLCとCD2耐電子Tリンパ球との相互作用に準拠しています。
ランゲルハンス細胞（LC）は、表皮と局所リンパ節の間を移動して抗原を提示します。この移動パターンには、細胞表面分子の変化するレパートリーの発現が必要です。この作業では、LCSでの接着分子CD 11/CD 18およびCD 58の発現を調査しました。ヒトの表皮細胞懸濁液は、FCでコーティングされたヒツジの赤血球でFC受容体がパンするFC受容体パンを含む2段階の技術を使用して、LCS（平均濃縮75％）で濃縮されました。実験ごとに得られた細胞の数は750,000（極端280,000-1,800,000）であり、次の抗体は、培養で48時間後に新鮮な懸濁液および/または48時間後にテストされました：BB3（抗シログロブリン陰性コントロールIgG2A）、OKT6（抗CD1A、Ortho）、Anti HLA-DR（Becton-Dickinson）、MHM 24（Anti CD 11a、白血球タイピングワークショップN（0）3）、MO1および44（抗CD 11B、白血球タイピングワークショップN（0）3）、抗CD 11C（免疫テクノロジー）、60.3およびMHM 23（抗CD 18、白血球タイピングワークショップN（0））2）、TS2/9.1.1（Anti CD 58、白血球タイピングワークショップn（0）3）。CD 11サブユニットのうち、CD 11Cのみが新鮮な懸濁液で発現したが、CD 18よりも弱く、培養で姿を消したことがわかりました。CD 58は新鮮な懸濁液では検出されませんでしたが、2日間の培養後に登場し、以前の研究を確認しました。したがって、LCは、培養前に組織マクロファージ（CD 18およびCD 11C）と同様の細胞表面特性を示します。培養後のCD 58の発現は、末梢リンパ節における抗原提示中のLCとCD2耐電子Tリンパ球との相互作用に準拠しています。
The Langerhans cell (LC) migrates between the epidermis and the regional lymph nodes to present antigens. This migration pattern requires the expression of a changing repertoire of cell-surface molecules. In this work, we have investigated the expression of the adhesion molecules CD 11/CD 18 and CD 58 on LCs. Human epidermal cell suspensions were enriched in LCs (mean enrichment 75%) using a two-step technique including a Ficoll-Hypaque gradient followed by Fc receptor panning with IgG-coated sheep erythrocytes. The number of cells obtained per experiment was 750,000 (extremes 280,000-1,800,000), and the following antibodies were tested on fresh suspensions and/or after 48 hours in culture: BB3 (antithyroglobulin negative control IgG2a), OKT6 (anti CD1a, Ortho), anti HLA-DR (Becton-Dickinson), MHM 24 (anti CD 11a, leukocyte typing workshop n(0)3), MO1 and 44 (anti CD 11b, leukocyte typing workshop n(0)3), anti CD 11c (Immunotech), 60.3 and MHM 23 (anti CD 18, leukocyte typing workshop n(0)2), TS2/9.1.1 (anti CD 58, leukocyte typing workshop n(0)3). We found that amongst CD 11 subunits, only CD 11c was expressed in fresh suspensions, but was weaker than CD 18, and disappeared with culture. CD 58 was not detected in fresh suspensions but appeared after 2 days of culture, confirming earlier work. Thus the LC exhibits cell surface characteristics similar to tissue macrophages (CD 18 and CD 11c) prior to culture. The expression of CD 58 after culture is in accordance with the interaction of LC with CD2 bearing T-lymphocytes during antigen presentation in peripheral lymph-nodes.
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