マウスのさまざまな株に吸わしいイソフルランを使用した長期麻酔 - 血行動態効果

この研究の目的は、小さな実験動物における生体内微小循環観察のための麻酔のシンプルで安全な方法を確立することでした。イソフルラン吸入麻酔の有用性は、実験医学で一般的に使用されるさまざまなマウス株で調査されています。これらは、毛のない（HR/HR、n = 12）、BALB/C（n = 12）、およびヌードマウス（nu/nu、n = 3）でした。麻酔は、誘導期の最大4％の濃度で蒸発したイソフルランのマスク吸入、急性外科的処置中は1.5％、長期の実験的観察中は0.8〜1.3％で維持されました。イソフルランは、n（2）o/o（2）混合物で蒸発し、32-36％f（i）o（2）で飽和しました。観察中、体温は37度Cで一定に保たれました。平均動脈血圧（MAP）と心拍数（HR）のモニタリングのために尾動脈をカニューレを挿入しました。体液のバランスを維持するために、等張生理食塩水を0.2 mL/hの一定速度で投与しました。実験の終わりに血液ガス分析のために動脈血液サンプルを採取しました。すべての動物は、3〜6.5時間続く麻酔プロトコルを生き延びました。イソフルラン吸入中、呼吸合併症や全身循環パラメーターの変化は観察されませんでした。MAPとHRの平均値は、観測期間全体でそれぞれ79 +/- 3 mmHgおよび486 +/- 13分（-1）でした。イソフルラン麻酔下の動物で中程度のアシドーシスが記録され、動脈血pH、P（A）O（2）およびPCO（2）値の変化（7.29 +/- 0.06、130 +/- 19 mmHgおよび35.6 +/--それぞれ4.7 mmHg）。結論として、イソフルランによる吸入麻酔は、（1）麻酔の投与の単純さ、（2）麻酔の迅速な誘導、（3）麻酔の深さの簡単な制御、（4）のためにマウスでの実験的研究に役立ちます。）合併症の割合が低く、（5）数時間続く観察中の安定したマップとHR。提案された手法は、生体内蛍光顕微鏡下での微小循環の観察に特に適しています。

The aim of this study was to establish a simple and safe method of anaesthesia for intravital microcirculatory observations in small laboratory animals. The usefulness of isoflurane inhalation anaesthesia has been investigated in different strains of mice commonly used in experimental medicine. These were the hairless (hr/hr, n = 12), the BALB/c (n = 12) and the nude mouse (nu/nu, n = 3). Anaesthesia was maintained by mask inhalation of isoflurane vaporized at concentrations of up to 4% in the induction phase, at 1.5% during acute surgical procedures and at 0.8-1.3% during prolonged experimental observations. Isoflurane was vapoured in a N(2)O/O(2) mixture and saturated with 32-36% F(i)O(2). During observations the body temperature was kept constant at 37 degrees C. The tail artery was cannulated for monitoring of mean arterial blood pressure (MAP) and heart rate (HR). To maintain the body fluid balance, isotonic saline was administered at a constant rate of 0.2 ml/h. Arterial blood samples were drawn for blood-gas analysis at the end of the experiments. All animals survived the anaesthesia protocol lasting between 3 and 6.5 h. During isoflurane inhalation, no breathing complications or changes in systemic circulatory parameters were observed. Mean values of MAP and HR were 79+/- 3 mmHg and 486+/- 13 min(-1), respectively, over the entire observation period. A moderate acidosis was recorded in animals under isoflurane anaesthesia, with alterations of arterial blood pH, p(a)O(2) and pCO(2) values (7.29+/- 0.06, 130+/- 19 mmHg and 35.6+/- 4.7 mmHg, respectively). In conclusion, inhalation anaesthesia with isoflurane is useful for experimental studies in the mouse due to (1) the simplicity of administration of the anaesthetic, (2) the rapid induction of anaesthesia, (3) easy control of the depth of anaesthesia, (4) the low percentage of complications, and (5) stable MAP and HR during observations lasting several hours. The proposed technique is especially suitable for observations of the microcirculation under intravital fluorescence microscopy.