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米国南部の羊とヤギの農場に関する最近の研究は、Haemonchus contortusにおける多層耐性が深刻な問題になっていることを示しています。耐性の進化には多くの要因が関与していますが、薬物選択の下での寄生虫集団の割合は、耐性がどれほど迅速に発生するかに影響を与える最も重要な要因であると考えられています。したがって、耐性の防止がワーム制御の重要な並列目標である場合、動物の一部を治療せずに残すことをお勧めします。最近、ファマチャと呼ばれる新しいシステムが南アフリカで開発され、貧血羊とヤギの臨床的同定が可能になりました。H. contortusが主要な寄生病原体である場合、このシステムを農場レベルに適用して、投与される治療数を減らすことができ、それによりレフュギアのワーム集団の割合を増加させます。ファマチャ法を検証するほとんどの研究は南アフリカで実行されているため、使用前に他の地域でこの方法をテストすることが重要です。アーカンソー州、ジョージア州、ルイジアナ州、フロリダ州、およびUSバージン諸島にある39の農場から、羊（n = 847）とヤギ（n = 537）のヤギ（n = 537）のシステムをテストすることにより、ファマチャの検証研究を実施しました。すべての動物の眼の結膜の色は、ファマチャカードを使用して1-5スケールでスコア付けされ、充填細胞体積（PCV）の測定のために各動物から血液サンプルを収集しました。糞便サンプルは、糞便卵数（FEC）の性能についてテストされた動物の大部分からも収集されました。PCVと眼球スコア、PCVとFEC、およびFECとアイスコアの相関はすべて、羊とヤギの両方で非常に重要でした（P <0.001）。FAMACHAスコアとPCVの両方のデータは、3、4、5または4および5の視力値の2つの別々の基準を使用して評価され、<OR = 19または<OR = 15のPCV値は貧血と見なされました。4と5の眼球スコア値が貧血と見なされ、貧血のPCVが切断された場合、特異性は最大化されました<OR = 19でしたが、感度は低かったです。対照的に、3、4、5のアイスコア値が貧血と見なされ、PCVのカットオフが<OR = 15であると見なされたとき、羊とヤギの両方で感度は100％でしたが、特異性は低かった。羊とヤギの両方で、陰性の予測値は、すべての貧血と眼球スコアのカテゴリで92％を超えており、<OR = 15の貧血のカットオフが使用された場合、両方の眼スコアカテゴリで99％を超えていました。陽性テストの予測値は、多くの非麻酔動物がこのシステムを使用して治療されることを示すすべての基準で低かった。ただし、すべての動物が治療されている従来の投与慣行と比較して、大部分の動物はまだ治療せずに残されます。これらのデータは、ファマチャ法が米国南部と米国領ヴァージン諸島の貧血羊とヤギを識別するための非常に有用なツールであることを示しています。ただし、Famachaベースの選択的治療プロトコルを統合された線虫制御プログラムに組み込むための最適な戦略を決定するには、さらなる研究が必要です。
米国南部の羊とヤギの農場に関する最近の研究は、Haemonchus contortusにおける多層耐性が深刻な問題になっていることを示しています。耐性の進化には多くの要因が関与していますが、薬物選択の下での寄生虫集団の割合は、耐性がどれほど迅速に発生するかに影響を与える最も重要な要因であると考えられています。したがって、耐性の防止がワーム制御の重要な並列目標である場合、動物の一部を治療せずに残すことをお勧めします。最近、ファマチャと呼ばれる新しいシステムが南アフリカで開発され、貧血羊とヤギの臨床的同定が可能になりました。H. contortusが主要な寄生病原体である場合、このシステムを農場レベルに適用して、投与される治療数を減らすことができ、それによりレフュギアのワーム集団の割合を増加させます。ファマチャ法を検証するほとんどの研究は南アフリカで実行されているため、使用前に他の地域でこの方法をテストすることが重要です。アーカンソー州、ジョージア州、ルイジアナ州、フロリダ州、およびUSバージン諸島にある39の農場から、羊（n = 847）とヤギ（n = 537）のヤギ（n = 537）のシステムをテストすることにより、ファマチャの検証研究を実施しました。すべての動物の眼の結膜の色は、ファマチャカードを使用して1-5スケールでスコア付けされ、充填細胞体積（PCV）の測定のために各動物から血液サンプルを収集しました。糞便サンプルは、糞便卵数（FEC）の性能についてテストされた動物の大部分からも収集されました。PCVと眼球スコア、PCVとFEC、およびFECとアイスコアの相関はすべて、羊とヤギの両方で非常に重要でした（P <0.001）。FAMACHAスコアとPCVの両方のデータは、3、4、5または4および5の視力値の2つの別々の基準を使用して評価され、<OR = 19または<OR = 15のPCV値は貧血と見なされました。4と5の眼球スコア値が貧血と見なされ、貧血のPCVが切断された場合、特異性は最大化されました<OR = 19でしたが、感度は低かったです。対照的に、3、4、5のアイスコア値が貧血と見なされ、PCVのカットオフが<OR = 15であると見なされたとき、羊とヤギの両方で感度は100％でしたが、特異性は低かった。羊とヤギの両方で、陰性の予測値は、すべての貧血と眼球スコアのカテゴリで92％を超えており、<OR = 15の貧血のカットオフが使用された場合、両方の眼スコアカテゴリで99％を超えていました。陽性テストの予測値は、多くの非麻酔動物がこのシステムを使用して治療されることを示すすべての基準で低かった。ただし、すべての動物が治療されている従来の投与慣行と比較して、大部分の動物はまだ治療せずに残されます。これらのデータは、ファマチャ法が米国南部と米国領ヴァージン諸島の貧血羊とヤギを識別するための非常に有用なツールであることを示しています。ただし、Famachaベースの選択的治療プロトコルを統合された線虫制御プログラムに組み込むための最適な戦略を決定するには、さらなる研究が必要です。
Recent studies on sheep and goat farms in the southern United States indicate that multiple-anthelmintic resistance in Haemonchus contortus is becoming a severe problem. Though many factors are involved in the evolution of resistance, the proportion of the parasite population under drug selection is believed to be the single most important factor influencing how rapidly resistance develops. Therefore, where prevention of resistance is an important parallel goal of worm control, it is recommended to leave a portion of the animals untreated. Recently, a novel system called FAMACHA was developed in South Africa, which enables clinical identification of anemic sheep and goats. When H. contortus is the primary parasitic pathogen, this system can be applied on the farm level to reduce the number of treatments administered, thereby increasing the proportion of the worm population in refugia. Since most studies validating the FAMACHA method have been performed in South Africa, it is important that the method be tested in other regions before its use is broadly recommended. We performed a validation study of FAMACHA by testing the system in sheep (n = 847) and goats (n = 537) of various breeds and ages from 39 farms located in Arkansas, Georgia, Louisiana, Florida, and the US Virgin Islands. The color of the ocular conjunctiva of all animals were scored on a 1-5 scale using the FAMACHA card, and blood samples were collected from each animal for determination of packed cell volume (PCV). Fecal samples were also collected from a majority of the animals tested for performance of fecal egg counts (FEC). Correlations between PCV and eye scores, PCV and FEC, and FEC and eye scores were all highly significant for both sheep and goats (P < 0.001). Data for both FAMACHA scores and PCV were evaluated using two separate criteria for anemia: eye score values of 3, 4 and 5 or 4 and 5, and PCV values of < or =19 or < or =15 were considered anemic. Specificity was maximized when eye score values of 4 and 5 were considered anemic and PCV cut off for anemia was < or =19, but sensitivity was low. In contrast, sensitivity was 100% for both sheep and goats when eye score values of 3, 4 and 5 were considered anemic and PCV cut off was < or =15, but specificity was low. In both sheep and goats, predictive value of a negative was greater than 92% for all anemia and eye score categories, and was greater than 99% for both eye score categories when an anemia cutoff of < or =15 was used. Predictive value of a positive test was low under all criteria indicating that many non-anemic animals would be treated using this system. However, compared to conventional dosing practices where all animals are treated, a large proportion of animals would still be left untreated. These data indicate that the FAMACHA method is an extremely useful tool for identifying anemic sheep and goats in the southern US and US Virgin Islands. However, further studies are required to determine optimal strategies for incorporating FAMACHA-based selective treatment protocols into integrated nematode control programs.
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