マウス卵胞液と女性の生殖路の栄養濃度

in vitroでのマウス卵母細胞と移植前胚の培養は、長年にわたって成功裏に使用されてきました。ただし、この慣行により、細胞ストレスが発生し、実行可能性が低下する可能性があります。この現象は、培地と母体の液体間の栄養素組成の違いに部分的に起因するため、マウスの脱排卵卵胞と卵管産生および子宮液のグルコース、ピルビン酸、乳酸、および19アミノ酸の濃度を決定しました。卵管液を抱えた卵巣から吸引したが、卵管産液（卵母細胞球体複合体を伴う/伴わない）および子宮液を自然のサイクリング動物から収集した。グルコース、ピルビン酸、および乳酸濃度は、超微小流体測定法を使用して分析されましたが、アミノ酸プロファイルは逆位相高性能液クロマトグラフィーによって決定されました。卵胞、卵管（累積細胞を含む/存在しない）および子宮液の平均グルコース濃度は、それぞれ0.46、1.09/1.65および0.61 mmol L（-1）でした。ピルビン酸濃度は、それぞれ0.38、0.37/0.17および0.25 mmol L（-1）であり、乳酸濃度はそれぞれ17.34、10.92/11.68および9.41 mmol L（-1）でした。卵管細胞の存在下では、ピルビン酸卵管濃度が有意に高く、グルコースは有意に低かった。タウリン、グリシン、アラニン、グルタミン、グルタミン酸は、検出された主要なアミノ酸でした。アミノ酸の濃度は液体間で異なり、卵管で最も高いレベルが見つかりました。卵胞液と路の栄養プロファイルは、マウスの成熟、受精、胚培地の栄養素のプロファイルとは異なりました。これらのデータは、細胞の代謝と卵母細胞と初期胚の栄養環境の理解を、in vivoの生殖路に沿って進行する際に拡張します。これらの結果は、マウス卵母細胞の成熟と胚培養のための栄養的により生理学的媒体の定式化にも寄与する可能性があります。

The culture of murine oocytes and preimplantation embryos in vitro has been used successfully for many years. However, this practice can result in cellular stress and reduced viability. Since this phenomenon is partly attributable to differences in nutrient composition between culture media and maternal tract fluids, we determined the concentrations of glucose, pyruvate, lactate and 19 amino acids in murine preovulatory follicles and oestrous oviductal and uterine fluids. Follicular fluids were aspirated from hyperstimulated ovaries, whereas oviductal fluids (with/without oocyte-cumulus complexes) and uterine fluids were collected from naturally cycling animals. Glucose, pyruvate and lactate concentrations were analysed using ultramicrofluorometric methods, whilst amino acid profiles were determined by reverse-phase high performance liquid chromatography. Mean glucose concentrations in follicular, oviduct (with/without cumulus cells) and uterine fluids were 0.46, 1.09/1.65 and 0.61 mmol l(-1), respectively. Pyruvate concentrations were 0.38, 0.37/0.17 and 0.25 mmol l(-1), respectively, and lactate concentrations were 17.34, 10.92/11.68 and 9.41 mmol l(-1), respectively. Oviductal pyruvate concentration was significantly higher, and glucose significantly lower, in the presence of cumulus cells. Taurine, glycine, alanine, glutamine and glutamate were the major amino acids detected. Concentrations of amino acids differed among fluids, with highest levels being found in the oviduct. The follicular fluid and tract nutrient profiles differed from those of murine maturation, fertilisation and embryo culture media. These data extend our understanding of cellular metabolism and of nutritional environments of the oocyte and early embryo as they progress along the reproductive tract in vivo. These results may also contribute to the formulation of nutritionally more physiological media for mouse oocyte maturation and embryo culture.