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Lucilia cuprinaおよびChrysomya bezzianaの有糸分裂およびポリテン細胞における18Sおよび28SリボソームRNAをコードする遺伝子の位置を、18 + 28Sリボソーム遺伝子プローブと銀染色のin situハイブリダイゼーションを使用して調査しました。両方の種で、リボソーム遺伝子は、性染色体ヘテロクロマチンの二次収縮領域に局在していました。L. cuprinaの有糸分裂細胞では、プローブはXおよびY染色体の短い腕の遠位二次収縮領域にハイブリダイズします。C. bezzianaでは、有糸分裂染色体リボソーム遺伝子は、XおよびY染色体の長い腕の遠位二次収縮領域に位置していました。両方の種のポリテントリコゲン細胞では、ハイブリダイゼーションの結果はポリテニーのレベルによって異なりました。低ポリテニーの細胞には単一のハイブリダイゼーション部位がありますが、より多くのポリテン化により、染色体外断片の数が増加してリボソーム遺伝子プローブに強くハイブリダイズします。性染色体を表す構造または常染色体でハイブリダイゼーションは発生しません。これらの結果は、核小体の断片化と分散がポリテン化中に発生することを示しています。不動と押しつぶされたポリテン核の両方の銀染色は、複数の多様なサイズの核小体の同一の挙動を示すため、in situハイブリダイゼーションの結果を確認します。L. cuprinaのウリジン取り込み研究は、核小体断片と同様の染色体外体で転写が起こることを示しました。L. cuprinaの男性、特に転座t(y; 2)540の核小体の断片化はより顕著です。染色体正常なC. bezzianaは、L。uprinaの男性と同様の核小体断片化レベルを示しています。リボソーム遺伝子は、周囲のヘテロクロマチンよりもはるかに大きな程度まで、トリコゲン細胞で不釣り合いに複製されます。核小体の断片化は遺伝子増幅システムかもしれませんが、二倍体量と比較して、リボソーム遺伝子がトリコゲン細胞で複製する程度はわかりません。
Lucilia cuprinaおよびChrysomya bezzianaの有糸分裂およびポリテン細胞における18Sおよび28SリボソームRNAをコードする遺伝子の位置を、18 + 28Sリボソーム遺伝子プローブと銀染色のin situハイブリダイゼーションを使用して調査しました。両方の種で、リボソーム遺伝子は、性染色体ヘテロクロマチンの二次収縮領域に局在していました。L. cuprinaの有糸分裂細胞では、プローブはXおよびY染色体の短い腕の遠位二次収縮領域にハイブリダイズします。C. bezzianaでは、有糸分裂染色体リボソーム遺伝子は、XおよびY染色体の長い腕の遠位二次収縮領域に位置していました。両方の種のポリテントリコゲン細胞では、ハイブリダイゼーションの結果はポリテニーのレベルによって異なりました。低ポリテニーの細胞には単一のハイブリダイゼーション部位がありますが、より多くのポリテン化により、染色体外断片の数が増加してリボソーム遺伝子プローブに強くハイブリダイズします。性染色体を表す構造または常染色体でハイブリダイゼーションは発生しません。これらの結果は、核小体の断片化と分散がポリテン化中に発生することを示しています。不動と押しつぶされたポリテン核の両方の銀染色は、複数の多様なサイズの核小体の同一の挙動を示すため、in situハイブリダイゼーションの結果を確認します。L. cuprinaのウリジン取り込み研究は、核小体断片と同様の染色体外体で転写が起こることを示しました。L. cuprinaの男性、特に転座t(y; 2)540の核小体の断片化はより顕著です。染色体正常なC. bezzianaは、L。uprinaの男性と同様の核小体断片化レベルを示しています。リボソーム遺伝子は、周囲のヘテロクロマチンよりもはるかに大きな程度まで、トリコゲン細胞で不釣り合いに複製されます。核小体の断片化は遺伝子増幅システムかもしれませんが、二倍体量と比較して、リボソーム遺伝子がトリコゲン細胞で複製する程度はわかりません。
The location of genes coding for 18S and 28S ribosomal RNA in mitotic and polytene cells of Lucilia cuprina and Chrysomya bezziana was investigated using in situ hybridization of an 18 + 28S ribosomal gene probe and silver staining. In both species ribosomal genes were localized to secondary constriction regions in sex chromosome heterochromatin. In L. cuprina mitotic cells the probe hybridizes to a distal secondary constriction region in the short arms of the X and Y chromosomes. In C. bezziana mitotic chromosomes ribosomal genes were located in distal secondary constriction regions in the long arms of the X and Y chromosomes. In polytene trichogen cells of both species, hybridization results varied with the level of polyteny. Cells of low polyteny have a single hybridization site, but with greater polytenization, increasing numbers of extrachromosomal fragments strongly hybridize to the ribosomal gene probe. No hybridization occurs in structures representing the sex chromosomes or in the autosomes. These results indicate that fragmentation and dispersal of the nucleolus occurs during polytenization. Silver staining of both unsquashed and squashed polytene nuclei show identical behaviour of multiple, varied-sized nucleolar bodies, thus confirming the in situ hybridization results. Uridine incorporation studies in L. cuprina indicated that transcription occurs in extrachromosomal bodies similar to nucleolar fragments. Nucleolar fragmentation is more pronounced in L. cuprina males, particularly in those with the translocation T(Y;2)540. Chromosomally normal C. bezziana show nucleolar fragmentation levels similar to that in L. cuprina males. Ribosomal genes are disproportionately replicated in trichogen cells to a much greater extent than surrounding heterochromatin. Nucleolar fragmentation may be a gene amplification system, but it is not known to what degree, relative to diploid amounts, ribosomal genes replicate in trichogen cells.
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