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The journal of histochemistry and cytochemistry : official journal of the Histochemistry Society2006Apr01Vol.54issue(4)

正常なヒト組織における内皮マーカーCD31、CD34、フォンウィルブランド因子、およびFLI-1の免疫組織化学的発現

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文献タイプ:
  • Journal Article
概要
Abstract

正常なヒト組織のさまざまな血管層の内皮細胞(EC)マーカーの発現と分布を比較した系統的研究はほとんど発表されていません。免疫組織化学により、主要な臓器および大血管のECにおけるCD31、CD34、フォンウィルブランド因子(VWF)、およびFLI-1の発現を調査しました。剖検および生検標本から得られた組織サンプルは、CD31、CD34、およびVWFについて、日常的に処理され、免疫組織化学的に染色されました。生検物質は、FLI-1、D2-40、およびLyve-1についても免疫組織化学的に染色されました。マーカーの発現パターンは、研究されたいくつかの臓器で不均一でした。腎臓では、糸球体の発電された内皮はCD31とCD34を強く発現しましたが、VWFで局所的に陽性または完全に陰性でした。CD31およびCD34で強く染色された肺の肺胞壁毛細血管毛細血管は、通常VWFでは陰性でした。VWFの染色強度は、肺の容器口径とともに徐々に増加しました。脾臓と肝臓の正弦波は、CD31に対して拡散的に陽性でした。それらは脾臓のCD34に対して陰性であり、肝臓の末梢領域でCD34のみを発現しました。FLI-1は、あらゆる種類のECではなくリンパ球でも発現していました。D2-40染色されたリンパ内皮のみ。Lyve-1免疫染色は、定期的に処理された組織に適用するには多様すぎました。血管の木におけるECマーカーCD31、CD34、およびVWFの発現は、個々の容器タイプと同じ臓器の異なる解剖学的区画に特定のパターンとともに不均一です。D2-40ラベルリンパ酸ECのみ。

正常なヒト組織のさまざまな血管層の内皮細胞(EC)マーカーの発現と分布を比較した系統的研究はほとんど発表されていません。免疫組織化学により、主要な臓器および大血管のECにおけるCD31、CD34、フォンウィルブランド因子(VWF)、およびFLI-1の発現を調査しました。剖検および生検標本から得られた組織サンプルは、CD31、CD34、およびVWFについて、日常的に処理され、免疫組織化学的に染色されました。生検物質は、FLI-1、D2-40、およびLyve-1についても免疫組織化学的に染色されました。マーカーの発現パターンは、研究されたいくつかの臓器で不均一でした。腎臓では、糸球体の発電された内皮はCD31とCD34を強く発現しましたが、VWFで局所的に陽性または完全に陰性でした。CD31およびCD34で強く染色された肺の肺胞壁毛細血管毛細血管は、通常VWFでは陰性でした。VWFの染色強度は、肺の容器口径とともに徐々に増加しました。脾臓と肝臓の正弦波は、CD31に対して拡散的に陽性でした。それらは脾臓のCD34に対して陰性であり、肝臓の末梢領域でCD34のみを発現しました。FLI-1は、あらゆる種類のECではなくリンパ球でも発現していました。D2-40染色されたリンパ内皮のみ。Lyve-1免疫染色は、定期的に処理された組織に適用するには多様すぎました。血管の木におけるECマーカーCD31、CD34、およびVWFの発現は、個々の容器タイプと同じ臓器の異なる解剖学的区画に特定のパターンとともに不均一です。D2-40ラベルリンパ酸ECのみ。

Few systematic studies have been published comparing the expression and distribution of endothelial cell (EC) markers in different vascular beds in normal human tissues. We investigated by immunohistochemistry the expression of CD31, CD34, von Willebrand factor (vWF), and Fli-1 in EC of the major organs and large vessels. Tissue samples obtained from autopsies and biopsy specimens were routinely processed and stained immunohistochemically for CD31, CD34, and vWF. Biopsy material was also stained immunohistochemically for Fli-1, D2-40, and Lyve-1. The expression pattern of the markers was heterogeneous in some of the organs studied. In the kidney, fenestrated endothelium of the glomeruli strongly expressed CD31 and CD34 but was only focally positive or completely negative for vWF. Alveolar wall capillaries of the lung strongly stained for CD31 and CD34 but were usually negative for vWF. The staining intensity for vWF increased gradually with the vessel caliber in the lung. Sinusoids of the spleen and liver were diffusely positive for CD31. They were negative for CD34 in the spleen and only expressed CD34 in the periportal area in the liver. Fli-1 was expressed in all types of EC but also in lymphocytes. D2-40 stained lymphatic endothelium only. Lyve-1 immunostaining was too variable to be applied to routinely processed tissues. The expression of EC markers CD31, CD34, and vWF in the vascular tree is heterogeneous with a specific pattern for individual vessel types and different anatomic compartments of the same organ. D2-40 labels lymphatic EC only.

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