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Photosynthesis research2006Jul01Vol.89issue(1)

アセトン、メタノール、エタノール溶媒の分光光度クロロフィル方程式の一貫したセット

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文献タイプ:
  • Journal Article
概要
Abstract

クロロフィルA(CHL A)およびアクセサリークロロフィルB、C2、C1 + C2、およびCHL Dを主要な光合成色素として使用し、CHL Aを持つAcaryochloris Marinaの特殊な症例を決定するための一連の方程式が90で開発されました。%アセトン、メタノールおよびエタノール溶媒。異なる溶媒のこれらの方程式は、互いに一致するクロロフィルアッセイを与えます。Chl Aの存在下でのChl C化合物(C2、C1 + C2)のアルゴリズムは以前にメタノールまたはエタノール用に公開されていません。検出されたすべての生物のクロロフィルの検出限界(および固有のエラー、+/- 95%信頼限界)は、一般に0.1マイクログ/mL未満でした。緑藻および陸上植物のCHL AおよびBアルゴリズムには、非常に小さな固有の誤差(<0.01マイクログ/ml)があります。Acaryochloris MarinaのCHL AおよびDアルゴリズムは互いに一致しており、HPLCを使用した以前に公開された推定値と1955年にジエチルエーテル用に最初に公開されためったに使用されていないアルゴリズムと一致するCHL D/A比の推定値を与えます。アルゴリズムについて説明します。クロロフィルアルゴリズムの固有の誤差は吸光度読み取りの大きさとは無関係に定数であるため、クロロフィルの測定の相対的な誤差は希釈クロロフィル抽出物で双曲線に増加します。安全上の理由、クロロフィルの効率的な抽出、およびポリスチレンキュベットを使用できるという利便性のために、エタノールのアルゴリズムはクロロフィルの日常的なアッセイに推奨されます。メタノールアルゴリズムは、HPLC作業に関連するアッセイに便利です。

クロロフィルA(CHL A)およびアクセサリークロロフィルB、C2、C1 + C2、およびCHL Dを主要な光合成色素として使用し、CHL Aを持つAcaryochloris Marinaの特殊な症例を決定するための一連の方程式が90で開発されました。%アセトン、メタノールおよびエタノール溶媒。異なる溶媒のこれらの方程式は、互いに一致するクロロフィルアッセイを与えます。Chl Aの存在下でのChl C化合物(C2、C1 + C2)のアルゴリズムは以前にメタノールまたはエタノール用に公開されていません。検出されたすべての生物のクロロフィルの検出限界(および固有のエラー、+/- 95%信頼限界)は、一般に0.1マイクログ/mL未満でした。緑藻および陸上植物のCHL AおよびBアルゴリズムには、非常に小さな固有の誤差(<0.01マイクログ/ml)があります。Acaryochloris MarinaのCHL AおよびDアルゴリズムは互いに一致しており、HPLCを使用した以前に公開された推定値と1955年にジエチルエーテル用に最初に公開されためったに使用されていないアルゴリズムと一致するCHL D/A比の推定値を与えます。アルゴリズムについて説明します。クロロフィルアルゴリズムの固有の誤差は吸光度読み取りの大きさとは無関係に定数であるため、クロロフィルの測定の相対的な誤差は希釈クロロフィル抽出物で双曲線に増加します。安全上の理由、クロロフィルの効率的な抽出、およびポリスチレンキュベットを使用できるという利便性のために、エタノールのアルゴリズムはクロロフィルの日常的なアッセイに推奨されます。メタノールアルゴリズムは、HPLC作業に関連するアッセイに便利です。

A set of equations for determining chlorophyll a (Chl a) and accessory chlorophylls b, c2, c1 + c2 and the special case of Acaryochloris marina, which uses Chl d as its primary photosynthetic pigment and also has Chl a, have been developed for 90% acetone, methanol and ethanol solvents. These equations for different solvents give chlorophyll assays that are consistent with each other. No algorithms for Chl c compounds (c2, c1 + c2) in the presence of Chl a have previously been published for methanol or ethanol. The limits of detection (and inherent error, +/- 95% confidence limit), for chlorophylls in all organisms tested, was generally less than 0.1 microg/ml. The Chl a and b algorithms for green algae and land plants have very small inherent errors (< 0.01 microg/ml). Chl a and d algorithms for Acaryochloris marina are consistent with each other, giving estimates of Chl d/a ratios which are consistent with previously published estimates using HPLC and a rarely used algorithm originally published for diethyl ether in 1955. The statistical error structure of chlorophyll algorithms is discussed. The relative error of measurements of chlorophylls increases hyperbolically in diluted chlorophyll extracts because the inherent errors of the chlorophyll algorithms are constants independent of the magnitude of absorbance readings. For safety reasons, efficient extraction of chlorophylls and the convenience of being able to use polystyrene cuvettes, the algorithms for ethanol are recommended for routine assays of chlorophylls. The methanol algorithms would be convenient for assays associated with HPLC work.

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