子牛腸炎の病因におけるクロストリジウムディフィシルの可能性のある役割

Clostridium difficileは、子牛の腸炎の可能性のある原因として調査されました。それぞれ生物とその毒素（TCDAとTCDB）は、下痢の子牛の便サンプルの25.3％と22.9％で発見されました。培養陽性サンプルは、培養マイナスのサンプルよりも毒素陽性である可能性が高かった。しかし、毒素陽性の便は非糖尿病子牛の間でより一般的でしたが、下痢の子牛は培養陽性である可能性がほぼ2倍でした。リボタイプ078は分離株の間で支配的でした。サルモネラsp。下痢と非糖尿病の両方の子牛の両方から分離されましたが、非糖尿病動物よりも下痢性の子牛で多数の大腸菌がより一般的に発見されました。コロナウイルスおよびクリプトスポリジウムsp。の有病率。下痢よりも非症状の子牛の方が大幅に高かったが、ロタウイルスとGiardia sp。の検出率。グループ間でほぼ同等でした。自然感染した子牛の病変には、関連する線維性滲出液との表在粘膜侵食が含まれていました。好中球と好酸球は、層固有層に浸透しました。C. difficileとの形態学的に互換性のある大きなグラム陽性棒は、結腸腔に豊富であり、生物は細菌学的培養によって分離された。毒素が結腸全体に発見されました。精製毒素AおよびB（個別および結合）は、結晶腸ループで液体の蓄積と同様に、同等の病変を引き起こしました。私たちの調査結果は、他の人々と実質的に合意しています[ロドリゲス・パラシオス、A。、Stampfli、H.R.、Duffield、T.、Peregrine、A.S.、Trotz-Williams、L.A.、Arroyo、L.G.、Brazier、J.S.、Weese、J.S.、2006。カナダの子牛におけるクロストリジウムディフィシルPCRリブタイプ。新興。感染。dis。12、1730-1736;Porter、M.C.、Reggiardo、C.、Bueschel、D.M.、Keel、M.K.、Songer、J.G.、2002。Clostridium difficileとウシ新生児下痢協会。Proc。第45アン。mtg。Amer。協会。獣医。ラボ。診断、ミズーリ州セントルイス、米国]、およびC. difficile感染とそれに伴う中毒が子牛の下痢として現れる可能性があるという作業仮説に強度を加えます。子牛はこの生物の増殖宿主として機能することは明らかです。

Clostridium difficile was investigated as a possible cause of enteritis in calves. The organism and its toxins (TcdA and TcdB), respectively, were found in 25.3% and 22.9% of stool samples from diarrheic calves. Culture positive samples were more likely than culture negative samples to be toxin positive. However, toxin positive stools were more common among nondiarrheic calves, but diarrheic calves were nearly twice as likely to be culture positive. Ribotype 078 was dominant among isolates. Salmonella sp. was isolated from both diarrheic and nondiarrheic calves, but large numbers of E. coli were found more commonly in diarrheic calves than in nondiarrheic animals. Prevalence rates for coronavirus and Cryptosporidium sp. were substantially higher in nondiarrheic calves than in diarrheic, but rates of detection of rotavirus and Giardia sp. were more nearly equal between groups. Lesions in naturally infected calves included superficial mucosal erosion with associated fibrinous exudates. Neutrophils and eosinophils infiltrated lamina propria. Large Gram-positive rods morphologically compatible with C. difficile were abundant in the colonic lumen and the organism was isolated by bacteriologic culture. Toxins were found throughout the colon. Purified toxins A and B (individually and conjointly) caused comparable lesions, as well as fluid accumulation, in ligated intestinal loops. Our findings are in substantial agreement with those of others [Rodriguez-Palacios, A., Stampfli, H.R., Duffield, T., Peregrine, A.S., Trotz-Williams, L.A., Arroyo, L.G., Brazier, J.S., Weese, J.S., 2006. Clostridium difficile PCR ribotypes in calves, Canada. Emerg. Infect. Dis. 12, 1730-1736; Porter, M.C., Reggiardo, C., Bueschel, D.M., Keel, M.K., Songer, J.G., 2002. Association of Clostridium difficile with bovine neonatal diarrhea. Proc. 45th Ann. Mtg. Amer. Assoc. Vet. Lab. Diagn., St. Louis, MO, U.S.A.] and add strength to a working hypothesis that C. difficile infection and the accompanying intoxication can manifest as diarrhea in calves. It seems clear that calves serve as multiplying hosts for this organism.