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Biochemical and biophysical research communications2008Apr04Vol.368issue(2)

ヒト血管妊娠線維芽細胞には、間葉系幹/前駆細胞が含まれています

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文献タイプ:
  • Journal Article
  • Research Support, Non-U.S. Gov't
概要
Abstract

血管外膜は、機能を変化させ、アテローム性動脈硬化症、血管再狭窄、線維症などの疾患に寄与すると考えられています。Admintitiaに間葉系幹/前駆細胞(MPC)が含まれているかどうかを判断するために、肺動脈からヒト血管臨床線維芽細胞(HVAF)を培養し、その特性を分析しました。HVAFSの倍増時間は1.5日で、平均通過数は11で、年齢と性別とは無関係でした。HVAFは、ビメンチン、コラーゲン型、CD29、CD44、およびCD105に対して陽性でしたが、造血および内皮細胞マーカーについては陰性でした。HVAFが適切な培地で培養されたとき、彼らはフォン・コッサ、アルカリホスファターゼ、およびオイルレッドO染色による骨形成および脂肪生成の分化を示しました。筋原性分化は、平滑筋アクチンとカルポニンの発現の増加によって特定されました。これらの発見は、ヒト血管外膜にMPCが含まれており、HVAFが幹細胞生物学と組織工学に関するさらなる実験の理想的なソースである可能性があることを示しています。

血管外膜は、機能を変化させ、アテローム性動脈硬化症、血管再狭窄、線維症などの疾患に寄与すると考えられています。Admintitiaに間葉系幹/前駆細胞(MPC)が含まれているかどうかを判断するために、肺動脈からヒト血管臨床線維芽細胞(HVAF)を培養し、その特性を分析しました。HVAFSの倍増時間は1.5日で、平均通過数は11で、年齢と性別とは無関係でした。HVAFは、ビメンチン、コラーゲン型、CD29、CD44、およびCD105に対して陽性でしたが、造血および内皮細胞マーカーについては陰性でした。HVAFが適切な培地で培養されたとき、彼らはフォン・コッサ、アルカリホスファターゼ、およびオイルレッドO染色による骨形成および脂肪生成の分化を示しました。筋原性分化は、平滑筋アクチンとカルポニンの発現の増加によって特定されました。これらの発見は、ヒト血管外膜にMPCが含まれており、HVAFが幹細胞生物学と組織工学に関するさらなる実験の理想的なソースである可能性があることを示しています。

Vascular adventitia is thought to change functions and contribute to diseases such as atherosclerosis, vascular restenosis, and fibrosis. To determine whether the adventitia contains mesenchymal stem/progenitor cells (MPCs), we cultured human vascular adventitial fibroblasts (hVAFs) from pulmonary arteries and analyzed their characteristics. The doubling time of the hVAFs was 1.5days, and the average number of passage was 11, which was independent of age and sex. The hVAFs were positive for vimentin, collagen type-1, CD29, CD44, and CD105, but negative for hematopoietic and endothelial cell markers. When hVAFs were cultured in appropriate media, they showed osteogenic and adipogenic differentiation by von Kossa, alkaline phosphatase, and oil red O staining. Myogenic differentiation was identified by increased expression of smooth muscle actin and calponin. These findings demonstrate that human vascular adventitia contains MPCs, and that hVAFs may be an ideal source for further experiments on stem cell biology and tissue engineering.

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