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目的：外科的に除去された暗号化球体精巣におけるアルドケトレダクターゼ1C3（AKR1C3）発現を特徴付ける。ヒトAKR1C3は、ケトステロイド、ケトプロスタグランジン、および脂質アルデヒドを還元する単量体、細胞質、多機能酵素です。AKR1C3の発現は、正常な成人のライディッヒ細胞および腹膜線維筋細胞で実証されています。さまざまな年齢層でAKR1C3発現パターンを評価した以前の研究はありません。 方法：外科的に切除された暗号化球状の精巣に、ヘマトキシリン - エオシン評価を受けて、全体的な精巣病理をレビューしました。次に、これらのサンプルは、単一特異的AKR1C3モノクローナル抗体による免疫組織化学染色を介してAKR1C3分布について評価されました。AKR1C3発現の単一病理学者グレーディングは、臨床症状と相関していました。 結果：2000年から現在までの合計16個の暗号性精巣が特定されました。手術時の年齢の中央値は9歳でした（範囲、1〜17）。精巣は、萎縮、組織の一貫性が低い、精子の長さが短いために切除されました。AKR1C3の発現は、精巣細管を囲む線維筋細胞のあらゆる年齢で同定されました。Tanner段階1および2では、Leydig細胞の発現は存在しませんでしたが、タナーステージ3以降で強い発現が見つかりました。どの段階でも胚細胞ではAKR1C3の発現は見られませんでした。AKR1C3の発現は、タナーステージ2以降の患者のセルトリ細胞の18％-26％で同定されました。 結論：AKR1C3の式は、タナー段階に依存するファッションで発生します。前および肺炎の変化は、ライディグ細胞の酵素の発現を促進するように見えます。正常な成人の精巣とは対照的に、小児の暗号角精巣は、セルトリ細胞におけるAKR1C3発現を明らかにしています。精巣の降下と発達におけるAKR1C3の関与を決定するために、追加の研究が保証されています。
目的：外科的に除去された暗号化球体精巣におけるアルドケトレダクターゼ1C3（AKR1C3）発現を特徴付ける。ヒトAKR1C3は、ケトステロイド、ケトプロスタグランジン、および脂質アルデヒドを還元する単量体、細胞質、多機能酵素です。AKR1C3の発現は、正常な成人のライディッヒ細胞および腹膜線維筋細胞で実証されています。さまざまな年齢層でAKR1C3発現パターンを評価した以前の研究はありません。 方法：外科的に切除された暗号化球状の精巣に、ヘマトキシリン - エオシン評価を受けて、全体的な精巣病理をレビューしました。次に、これらのサンプルは、単一特異的AKR1C3モノクローナル抗体による免疫組織化学染色を介してAKR1C3分布について評価されました。AKR1C3発現の単一病理学者グレーディングは、臨床症状と相関していました。 結果：2000年から現在までの合計16個の暗号性精巣が特定されました。手術時の年齢の中央値は9歳でした（範囲、1〜17）。精巣は、萎縮、組織の一貫性が低い、精子の長さが短いために切除されました。AKR1C3の発現は、精巣細管を囲む線維筋細胞のあらゆる年齢で同定されました。Tanner段階1および2では、Leydig細胞の発現は存在しませんでしたが、タナーステージ3以降で強い発現が見つかりました。どの段階でも胚細胞ではAKR1C3の発現は見られませんでした。AKR1C3の発現は、タナーステージ2以降の患者のセルトリ細胞の18％-26％で同定されました。 結論：AKR1C3の式は、タナー段階に依存するファッションで発生します。前および肺炎の変化は、ライディグ細胞の酵素の発現を促進するように見えます。正常な成人の精巣とは対照的に、小児の暗号角精巣は、セルトリ細胞におけるAKR1C3発現を明らかにしています。精巣の降下と発達におけるAKR1C3の関与を決定するために、追加の研究が保証されています。
OBJECTIVES: To characterize aldo-keto reductase 1C3 (AKR1C3) expression in surgically-removed cryptorchid testes. Human AKR1C3 is a monomeric, cytoplasmic, multifunctional enzyme that reduces ketosteroids, ketoprostaglandins, and lipid aldehydes. AKR1C3 expression has been demonstrated in normal adult Leydig cells and peritubular fibromyocytes. No prior studies have evaluated AKR1C3 expression patterns across different age groups. METHODS: Surgically excised cryptorchid testes were subjected to hematoxylin-eosin evaluation to review overall testicular pathology. These samples were then evaluated for AKR1C3 distribution via immunohistochemical staining with a monospecific AKR1C3 monoclonal antibody. Single-pathologist grading of AKR1C3 expression was correlated with clinical presentations. RESULTS: A total of 16 cryptorchid testes were identified from the 2000 to present. Median age at the time of surgery was 9 years (range, 1-17). The testes were excised due to atrophy, poor tissue consistency, and short spermatic cord length. AKR1C3 expression was identified at all ages in fibromyocytes surrounding the testicular tubules. Leydig cell expression was absent at Tanner stages 1 and 2, while strong expression was found at Tanner stage 3 and beyond. No AKR1C3 expression was seen in germ cells at any stage. AKR1C3 expression was identified in 18%-26% of Sertoli cells in patients at Tanner stages 2 and beyond. CONCLUSIONS: AKR1C3 expression occurs in a Tanner stage dependent-fashion. Pre- and peri-pubertal changes appear to promote expression of the enzyme in Leydig cells. In contrast to the normal adult testis, the pediatric cryptorchid testis reveals AKR1C3 expression in Sertoli cells. Additional studies are warranted to determine the involvement of AKR1C3 in testicular descent and development.
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