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バイオフィルムは、紙の機械に走りやすさの問題を引き起こすため、バイオシドで制御されます。ペラ酢酸は通常、かさばるバイオフィルムの防止に効果的です。この研究では、ペーパーマシンの微生物学的状態を調査しました。この微生物学的状態では、ペラ酢酸の低濃度(15 ppm以下の有効成分)が数年間使用されていました。紙のマシンには、少量のバイオフィルムが含まれていました。この環境からのバイオフィルム形成細菌は分離され、16S RRNA遺伝子シーケンス、全細胞脂肪酸分析、生化学試験、およびDNAフィンガープリントによって特徴付けられました。分離株の75%が、Sphingomonas trueperiおよびS. aquatilisのサブクレードのメンバーとして、その他は属Burkholderia属(B.セパシア複合体)、メチロバクテリウム、およびリゾビウムの種として特定されました。隔離培地は、一般的な紙の機械バイオフォーラーdeinococcus、meiothermus、およびpseudoxanthomonasに適していましたが、これらはどれも発見されておらず、ペラ酢酸が成長を妨げたことを示しています。バイオフィルムを形成する能力の自発的で不可逆的な損失は、サブクレードS. trueperiの特定の分離株のサブカルチャー中に観察されました。スフィンゴモナス分離株は、紙張りのアンチフォーリングに使用される濃度(10 ppmの有効成分)でペラ酢酸を許容するモノカルチャーバイオフィルムを形成しました。プロセス水の高いpHおよび低導電率は、スフィンゴモナスsp。バイオフィルム。これは、産業を使用した温水のバイオフィルムフォーマーとしてのスフィンゴモナドに関する最初の報告のようです。
バイオフィルムは、紙の機械に走りやすさの問題を引き起こすため、バイオシドで制御されます。ペラ酢酸は通常、かさばるバイオフィルムの防止に効果的です。この研究では、ペーパーマシンの微生物学的状態を調査しました。この微生物学的状態では、ペラ酢酸の低濃度(15 ppm以下の有効成分)が数年間使用されていました。紙のマシンには、少量のバイオフィルムが含まれていました。この環境からのバイオフィルム形成細菌は分離され、16S RRNA遺伝子シーケンス、全細胞脂肪酸分析、生化学試験、およびDNAフィンガープリントによって特徴付けられました。分離株の75%が、Sphingomonas trueperiおよびS. aquatilisのサブクレードのメンバーとして、その他は属Burkholderia属(B.セパシア複合体)、メチロバクテリウム、およびリゾビウムの種として特定されました。隔離培地は、一般的な紙の機械バイオフォーラーdeinococcus、meiothermus、およびpseudoxanthomonasに適していましたが、これらはどれも発見されておらず、ペラ酢酸が成長を妨げたことを示しています。バイオフィルムを形成する能力の自発的で不可逆的な損失は、サブクレードS. trueperiの特定の分離株のサブカルチャー中に観察されました。スフィンゴモナス分離株は、紙張りのアンチフォーリングに使用される濃度(10 ppmの有効成分)でペラ酢酸を許容するモノカルチャーバイオフィルムを形成しました。プロセス水の高いpHおよび低導電率は、スフィンゴモナスsp。バイオフィルム。これは、産業を使用した温水のバイオフィルムフォーマーとしてのスフィンゴモナドに関する最初の報告のようです。
Biofilms cause runnability problems in paper machines and are therefore controlled with biocides. Peracetic acid is usually effective in preventing bulky biofilms. This study investigated the microbiological status of a paper machine where low concentrations (≤ 15 ppm active ingredient) of peracetic acid had been used for several years. The paper machine contained a low amount of biofilms. Biofilm-forming bacteria from this environment were isolated and characterized by 16S rRNA gene sequencing, whole-cell fatty acid analysis, biochemical tests, and DNA fingerprinting. Seventy-five percent of the isolates were identified as members of the subclades Sphingomonas trueperi and S. aquatilis, and the others as species of the genera Burkholderia (B. cepacia complex), Methylobacterium, and Rhizobium. Although the isolation media were suitable for the common paper machine biofoulers Deinococcus, Meiothermus, and Pseudoxanthomonas, none of these were found, indicating that peracetic acid had prevented their growth. Spontaneous, irreversible loss of the ability to form biofilm was observed during subculturing of certain isolates of the subclade S. trueperi. The Sphingomonas isolates formed monoculture biofilms that tolerated peracetic acid at concentrations (10 ppm active ingredient) used for antifouling in paper machines. High pH and low conductivity of the process waters favored the peracetic acid tolerance of Sphingomonas sp. biofilms. This appears to be the first report on sphingomonads as biofilm formers in warm water using industries.
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