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Digestive diseases and sciences2011Dec01Vol.56issue(12)

トレフォイルファクターファミリー2および胃腺粘膜粘液細胞型ムチンに免疫測定法を使用したヘリコバクターピロリ感染患者の胃表面粘膜ゲル層の病態生理学的調査

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文献タイプ:
  • Comparative Study
  • Journal Article
  • Research Support, Non-U.S. Gov't
概要
Abstract

背景:Trefoil因子ファミリー(TFF)2タンパク質は胃腺粘液細胞(GMCS)によって生成され、分泌されたTFF2はGMC型ムチンと粘膜バリア機能を共有します。最近、胃液中のGMC型ムチンを測定するために、酵素結合免疫吸着剤アッセイ(ELISA)法を提示しました。 目的:TFF2のELISAを開発し、ヘリコバクターピロリ感染患者の胃表面粘液ゲル層(SMGL)の病態生理学的変化を評価することを目指しました。 方法:SMGLにおけるTFF2およびGMC型ムチンの分布は、免疫組織化学的に決定されました。TFF2のELISAは、ポリクローナルヤギ抗体に基づいていました。組換えTFF2を使用して、キャリブレーターを準備しました。健康な人(n = 33)および胃炎の患者(n = 37)、胃潰瘍(n = 16)、および十二指腸潰瘍(n = 10)の胃液中のTFF2およびGMC型ムチンをELISAを使用してアッセイしました。 結果:TFF2およびGMC型ムチンは、胃SMGLおよびGMCで免疫組織化学的に共局在していました。患者のTFF2レベルは、健康な個人のTFF2レベルよりも有意に高かった。さらに、H。pylori陽性患者のTFF2レベルは、H。pylori陰性患者の患者よりも有意に高く、感染症の根絶後に減少しました。GMC型ムチンレベルは、TFF2レベルの傾向と同様の傾向を示しました。 結論:TFF2およびGMC型ムチン分泌のアップレギュレーションは、H。pylori誘発性の損傷に対する胃粘膜の反応を反映している可能性があります。SMGLに分泌されるTFF2およびGMC型ムチンは、H。pyloriに対して胃粘膜を保護する可能性があります。

背景:Trefoil因子ファミリー(TFF)2タンパク質は胃腺粘液細胞(GMCS)によって生成され、分泌されたTFF2はGMC型ムチンと粘膜バリア機能を共有します。最近、胃液中のGMC型ムチンを測定するために、酵素結合免疫吸着剤アッセイ(ELISA)法を提示しました。 目的:TFF2のELISAを開発し、ヘリコバクターピロリ感染患者の胃表面粘液ゲル層(SMGL)の病態生理学的変化を評価することを目指しました。 方法:SMGLにおけるTFF2およびGMC型ムチンの分布は、免疫組織化学的に決定されました。TFF2のELISAは、ポリクローナルヤギ抗体に基づいていました。組換えTFF2を使用して、キャリブレーターを準備しました。健康な人(n = 33)および胃炎の患者(n = 37)、胃潰瘍(n = 16)、および十二指腸潰瘍(n = 10)の胃液中のTFF2およびGMC型ムチンをELISAを使用してアッセイしました。 結果:TFF2およびGMC型ムチンは、胃SMGLおよびGMCで免疫組織化学的に共局在していました。患者のTFF2レベルは、健康な個人のTFF2レベルよりも有意に高かった。さらに、H。pylori陽性患者のTFF2レベルは、H。pylori陰性患者の患者よりも有意に高く、感染症の根絶後に減少しました。GMC型ムチンレベルは、TFF2レベルの傾向と同様の傾向を示しました。 結論:TFF2およびGMC型ムチン分泌のアップレギュレーションは、H。pylori誘発性の損傷に対する胃粘膜の反応を反映している可能性があります。SMGLに分泌されるTFF2およびGMC型ムチンは、H。pyloriに対して胃粘膜を保護する可能性があります。

BACKGROUND: The trefoil factor family (TFF) 2 protein is produced by gastric gland mucous cells (GMCs), and the secreted TFF2 shares a mucosal barrier function with GMC-type mucin. Recently, we presented an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) method for measurement of GMC-type mucin in the gastric juice. AIMS: We aimed to develop an ELISA for TFF2 and to assess pathophysiological changes in the gastric surface mucous gel layer (SMGL) of patients with Helicobacter pylori infection. METHODS: The distribution of TFF2 and GMC-type mucin in the SMGL was immunohistochemically determined. The ELISA for TFF2 was based on a polyclonal goat antibody. Recombinant TFF2 was employed to prepare the calibrators. TFF2 and GMC-type mucin in the gastric juice in healthy individuals (n = 33) and patients with gastritis (n = 37), gastric ulcer (n = 16), and duodenal ulcer (n = 10) were assayed using ELISA. RESULTS: TFF2 and GMC-type mucin were immunohistochemically co-localized in the gastric SMGL and GMCs. The TFF2 levels in the patients were significantly higher than those in the healthy individuals. Further, the TFF2 levels in the H. pylori-positive patients were significantly higher than those in the H. pylori-negative patients, and decreased after the eradication of the infection. GMC-type mucin levels showed a tendency similar to that of TFF2 levels. CONCLUSIONS: The upregulation of TFF2 and GMC-type mucin secretion may reflect the response of the gastric mucosa to H. pylori-induced injuries. TFF2 and GMC-type mucin secreted into the SMGL may protect the gastric mucosa against H. pylori.

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