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2010年、Clinical and Laboratory Standards Institute（CLSI）は、腸内細菌科のセファロスポリンとアズトレオナムの感受性ブレークポイントを低下させ、拡張スペクトルβ-ラクタマーゼ（ESBL）および確認試験のスクリーニングを実行する必要性を排除しました。この研究の目的は、新しいブレークポイントを使用して感受性の3つの一般的な種の腸内菌試験のESBL生産株の数を決定することでした。CLSIスクリーニングおよび確認テストで決定されたように、2007年から2008年の間にHuashan病院で382連続したESBL生産株が収集されました。感受性は、CLSI寒天希釈法によって決定されました。CTX-M-、TEM、およびSHV特異的遺伝子は、PCR増幅と配列決定によって決定されました。BLA（CTX-M）遺伝子は、これらのESBL産生株の92.7％（354/382）にBLA（SHV）との組み合わせで存在していました。K. pneumoniaeの42（25.6％）株は、SHV型ESBLを単独または組み合わせて抱いていました。TEM ESBLは見つかりませんでした。新しいブレークポイントを利用すると、382株はすべてセファゾリン、セフォタキシム、セフトリアキソンに耐性があり、P。mirabilis株の85.0〜96.7％は、セフタジジム、セフェピム、およびアズトレオナム、41.8から45.6％のエズン系の455.6％に耐性がありました。CeftazidimeおよびCefepimeの影響を受けやすく、K。pneumoniaeの20.1％はセフェピムの影響を受けやすくなりました。結論として、腸内菌のすべてのESBL生産株は、新しいCLSIブレークポイントを使用することにより、セファゾリン、セフォタキシム、およびセフトリアキサンに耐性があると報告されていますが、かなりの数のESBLを含むP.ミラビリスと大腸菌株は報告されます。CTX-MタイプのESBLの有病率が高いため、Ceftazidime、Cefepime、およびAztreonamの影響を受けやすいです。
2010年、Clinical and Laboratory Standards Institute（CLSI）は、腸内細菌科のセファロスポリンとアズトレオナムの感受性ブレークポイントを低下させ、拡張スペクトルβ-ラクタマーゼ（ESBL）および確認試験のスクリーニングを実行する必要性を排除しました。この研究の目的は、新しいブレークポイントを使用して感受性の3つの一般的な種の腸内菌試験のESBL生産株の数を決定することでした。CLSIスクリーニングおよび確認テストで決定されたように、2007年から2008年の間にHuashan病院で382連続したESBL生産株が収集されました。感受性は、CLSI寒天希釈法によって決定されました。CTX-M-、TEM、およびSHV特異的遺伝子は、PCR増幅と配列決定によって決定されました。BLA（CTX-M）遺伝子は、これらのESBL産生株の92.7％（354/382）にBLA（SHV）との組み合わせで存在していました。K. pneumoniaeの42（25.6％）株は、SHV型ESBLを単独または組み合わせて抱いていました。TEM ESBLは見つかりませんでした。新しいブレークポイントを利用すると、382株はすべてセファゾリン、セフォタキシム、セフトリアキソンに耐性があり、P。mirabilis株の85.0〜96.7％は、セフタジジム、セフェピム、およびアズトレオナム、41.8から45.6％のエズン系の455.6％に耐性がありました。CeftazidimeおよびCefepimeの影響を受けやすく、K。pneumoniaeの20.1％はセフェピムの影響を受けやすくなりました。結論として、腸内菌のすべてのESBL生産株は、新しいCLSIブレークポイントを使用することにより、セファゾリン、セフォタキシム、およびセフトリアキサンに耐性があると報告されていますが、かなりの数のESBLを含むP.ミラビリスと大腸菌株は報告されます。CTX-MタイプのESBLの有病率が高いため、Ceftazidime、Cefepime、およびAztreonamの影響を受けやすいです。
In 2010 the Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) lowered the susceptibility breakpoints of some cephalosporins and aztreonam for Enterobacteriaceae and eliminated the need to perform screening for extended-spectrum β-lactamases (ESBLs) and confirmatory tests. The aim of this study was to determine how many ESBL-producing strains of three common species of Enterobacteriaceae test susceptible using the new breakpoints. As determined with the CLSI screening and confirmatory tests, 382 consecutive ESBL-producing strains were collected at Huashan Hospital between 2007 and 2008, including 158 strains of Escherichia coli, 164 of Klebsiella pneumoniae, and 60 of Proteus mirabilis. Susceptibility was determined by the CLSI agar dilution method. CTX-M-, TEM-, and SHV-specific genes were determined by PCR amplification and sequencing. bla(CTX-M) genes alone or in combination with bla(SHV) were present in 92.7% (354/382) of these ESBL-producing strains. Forty-two (25.6%) strains of K. pneumoniae harbored SHV-type ESBLs alone or in combination. No TEM ESBLs were found. Utilizing the new breakpoints, all 382 strains were resistant to cefazolin, cefotaxime, and ceftriaxone, while 85.0 to 96.7% of P. mirabilis strains tested susceptible to ceftazidime, cefepime, and aztreonam, 41.8 to 45.6% of E. coli strains appeared to be susceptible to ceftazidime and cefepime, and 20.1% of K. pneumoniae were susceptible to cefepime. In conclusion, all ESBL-producing strains of Enterobacteriaceae would be reported to be resistant to cefazolin, cefotaxime, and ceftriaxone by using the new CLSI breakpoints, but a substantial number of ESBL-containing P. mirabilis and E. coli strains would be reported to be susceptible to ceftazidime, cefepime, and aztreonam, which is likely due to the high prevalence of CTX-M type ESBLs.
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