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マトリックス支援レーザー脱着/イオン化質量分析(MALDI-MS)は、組織から直接分子を分析するための貴重なツールです。特にこれらの脂質がさまざまな病理学的プロセスに関係しているため、リン脂質のイメージングは広範囲にわたる関心を集めています。ホルマリン固定(FF)は、疾患の診断と予後を支援するために、分析のために組織を保存するために世界中の組織学研究所で使用される標準的なプロトコルです。この研究では、アーカイブ組織の将来の分析を考慮して、ホルマリン固定組織におけるリン脂質のマルディイメージングを直接評価します。この調査は、前処理プロトコルなしで、ホルマリン固定組織での脂質の分布を直接研究するためのMaldi-MSIの生存率を証明しています。いくつかのホスファチジルコリン(PC)およびスフィンゴミエリン(SM)種の高品質の分子画像が提示されています。画像は、新たに調製された組織から直接脂質の分析のために、以前に公開されたデータとよく対応しています。新鮮と比較して固定組織を分析するときに異なるイオン化経路が観察され、この変化は固定プロトコルで使用されるホルマリン緩衝液に関連していることがわかりました。ホルマリン固定組織から脂質を直接分析する能力は、疾患プロファイルの調査で新しいドアを開きます。組織学的調査のために採取された病理学的標本は、MALDI-MSによって分析され、病気の組織への脂質の関与に関するより多くの情報を提供できます。
マトリックス支援レーザー脱着/イオン化質量分析(MALDI-MS)は、組織から直接分子を分析するための貴重なツールです。特にこれらの脂質がさまざまな病理学的プロセスに関係しているため、リン脂質のイメージングは広範囲にわたる関心を集めています。ホルマリン固定(FF)は、疾患の診断と予後を支援するために、分析のために組織を保存するために世界中の組織学研究所で使用される標準的なプロトコルです。この研究では、アーカイブ組織の将来の分析を考慮して、ホルマリン固定組織におけるリン脂質のマルディイメージングを直接評価します。この調査は、前処理プロトコルなしで、ホルマリン固定組織での脂質の分布を直接研究するためのMaldi-MSIの生存率を証明しています。いくつかのホスファチジルコリン(PC)およびスフィンゴミエリン(SM)種の高品質の分子画像が提示されています。画像は、新たに調製された組織から直接脂質の分析のために、以前に公開されたデータとよく対応しています。新鮮と比較して固定組織を分析するときに異なるイオン化経路が観察され、この変化は固定プロトコルで使用されるホルマリン緩衝液に関連していることがわかりました。ホルマリン固定組織から脂質を直接分析する能力は、疾患プロファイルの調査で新しいドアを開きます。組織学的調査のために採取された病理学的標本は、MALDI-MSによって分析され、病気の組織への脂質の関与に関するより多くの情報を提供できます。
Matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry (MALDI-MS) is a valuable tool for the analysis of molecules directly from tissue. Imaging of phospholipids is gaining widespread interest, particularly as these lipids have been implicated in a variety of pathologic processes. Formalin fixation (FF) is the standard protocol used in histology laboratories worldwide to preserve tissue for analysis, in order to aid in the diagnosis and prognosis of diseases. This study assesses MALDI imaging of phospholipids directly in formalin fixed tissue, with a view to future analysis of archival tissue. This investigation proves the viability of MALDI-MSI for studying the distribution of lipids directly in formalin fixed tissue, without any pretreatment protocols. High quality molecular images for several phosphatidylcholine (PC) and sphingomyelin (SM) species are presented. Images correspond well with previously published data for the analysis of lipids directly from freshly prepared tissue. Different ionization pathways are observed when analyzing fixed tissue compared with fresh, and this change was found to be associated with formalin buffers employed in fixation protocols. The ability to analyze lipids directly from formalin fixed tissue opens up new doors in the investigation of disease profiles. Pathologic specimens taken for histologic investigation can be analyzed by MALDI-MS to provide greater information on the involvement of lipids in diseased tissue.
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