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目的：OXA-48様カルバペネマーゼを産生する腸内菌の英国の臨床分離株を特徴付け、耐性プラスミドを比較します。 方法：OXA-48様酵素を生成する26個の腸内細菌が研究されました。これらは、英国の22の多様な病院からのものでした。大腸菌と肺炎術の分離株は、多焦点シーケンスタイピングによりクローン系統に割り当てられました。カルバペネマーゼ遺伝子とその遺伝環境は、PCRとシーケンスによって特徴付けられました。耐性プラスミドは、形質転換または共役により転写され、重要なプラスミド機能をコードする遺伝子の制限分析とPCRによって比較されました。 結果：Pneumoniaeの13分の分離株、10 E. coli、2つのEnterobacter cloacaeには、古典的なBLA（OXA-48）遺伝子がありました。K.肺炎分離株は、ST131およびST38を含む11のシーケンスタイプ（STS）と大腸菌から7つのSTSに属していました。BLA（OXA-48）遺伝子は、関連する≈50kbまたは≈62kbプラスミドのTN1999またはTN1999.2トランスポゾン内に配置されました。-9およびCTX-Mグループ-9β-ラクタマーゼ。1つのインド関連K.肺炎分離株は、7 kbプラスミド上のISECP1挿入配列に関連してBLA（OXA-181）遺伝子を有していました。 結論：関連するプラスミドの水平移動により、OxA-48カルバペネマーゼの複数の腸菌菌種への拡散が促進されました。生産者のクローンの多様性は、英国への繰り返しの導入を提案しています。一部の生産者のための低カルバペネムマイクは、検出を複雑にし、認識されていないスプレッドのリスクを生み出します。
目的：OXA-48様カルバペネマーゼを産生する腸内菌の英国の臨床分離株を特徴付け、耐性プラスミドを比較します。 方法：OXA-48様酵素を生成する26個の腸内細菌が研究されました。これらは、英国の22の多様な病院からのものでした。大腸菌と肺炎術の分離株は、多焦点シーケンスタイピングによりクローン系統に割り当てられました。カルバペネマーゼ遺伝子とその遺伝環境は、PCRとシーケンスによって特徴付けられました。耐性プラスミドは、形質転換または共役により転写され、重要なプラスミド機能をコードする遺伝子の制限分析とPCRによって比較されました。 結果：Pneumoniaeの13分の分離株、10 E. coli、2つのEnterobacter cloacaeには、古典的なBLA（OXA-48）遺伝子がありました。K.肺炎分離株は、ST131およびST38を含む11のシーケンスタイプ（STS）と大腸菌から7つのSTSに属していました。BLA（OXA-48）遺伝子は、関連する≈50kbまたは≈62kbプラスミドのTN1999またはTN1999.2トランスポゾン内に配置されました。-9およびCTX-Mグループ-9β-ラクタマーゼ。1つのインド関連K.肺炎分離株は、7 kbプラスミド上のISECP1挿入配列に関連してBLA（OXA-181）遺伝子を有していました。 結論：関連するプラスミドの水平移動により、OxA-48カルバペネマーゼの複数の腸菌菌種への拡散が促進されました。生産者のクローンの多様性は、英国への繰り返しの導入を提案しています。一部の生産者のための低カルバペネムマイクは、検出を複雑にし、認識されていないスプレッドのリスクを生み出します。
OBJECTIVES: To characterize UK clinical isolates of Enterobacteriaceae producing OXA-48-like carbapenemases and to compare their resistance plasmids. METHODS: Twenty-six enterobacteria producing OXA-48-like enzymes were studied. These were from 22 diverse hospitals in the UK. Isolates of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae were assigned to clonal lineages by multilocus sequence typing. Carbapenemase genes and their genetic environments were characterized by PCR and sequencing. Resistance plasmids were transferred by transformation or conjugation and compared by restriction analysis and PCR for genes encoding critical plasmid functions. RESULTS: Thirteen isolates of K. pneumoniae, 10 E. coli and 2 Enterobacter cloacae harboured a classical bla(OXA-48) gene; the K. pneumoniae isolates belonged to 11 sequence types (STs) and the E. coli to 7 STs, including ST131 and ST38. The bla(OXA-48) genes were located within either Tn1999 or Tn1999.2 transposons on related ≈ 50 kb or ≈ 62 kb plasmids, which lacked other resistance genes or, in one isolate, on an ≈ 140 kb plasmid that also encoded OXA-9 and CTX-M group-9 β-lactamases. One India-linked K. pneumoniae isolate had a bla(OXA-181) gene in association with an ISEcp1 insertion sequence on a 7 kb plasmid. CONCLUSIONS: Horizontal transfer of related plasmids has facilitated the spread of OXA-48 carbapenemase into multiple strains of several Enterobacteriaceae species. The clonal diversity of the producers suggests repeated introduction into the UK. Low carbapenem MICs for some producers complicates detection and creates a risk for unrecognized spread.
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