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目的:拡張スペクトルβ-ラクタマーゼ(ESBL)生産性の大腸菌におけるプラスミド媒介キノロン抵抗性決定因子QNR、AAC(6 ')-IB-CRおよびQEPの有病率を特徴付けること、およびこれらの決定要因のCTX-MグループとのCTX-Mグループの関連を決定する。 材料と方法:CLSIに従って寒天希釈技術を使用して、70の大腸菌臨床分離株に対する15の抗菌剤のMICが決定されました。QNRA、QNRB、QNRS、AAC(6 ')-IB、QEP、およびCTX-M遺伝子のスクリーニングは、PCR増幅とDNAシーケンスによって実行されました。硬化を使用して、QNR、AAC(6 ')-IB、QEP、またはESBLエンコード遺伝子がプラスミド上にあるかどうかを確認しました。 結果:70の大腸菌臨床分離株のうち、61は少なくとも1つの抗生物質に耐性があり、16(22.8%)が多剤耐性、30(42%)がESBL生産者でした。30のESBL生産者のうち、大腸菌分離株のうち、8人(26.6%)がQNR遺伝子に対して陽性であり、QNRA1-、QNRB1およびQNRS1タイプの遺伝子は、それぞれ5(16.6%)、7(23.3%)および5(16.6%)分離株で単独または組み合わせて検出されました。7つの(23.3%)分離株はAAC(6 ')-IB-CRで陽性であり、QEPA4に対して陽性である2つ(6.6%)の分離株のみが陽性でした。硬化時のすべてのプラスミドの喪失は、QNR、AAC(6 ')-IB-CR、QEP A4、およびESBLエンコード遺伝子が常にプラスミド媒介であることを示唆しました。8 QNR陽性分離株のうち5はCTX-M-1とCTX-M-9の両方に関連していたが、6 AAC(6 ')-IB-CR陽性分離株から2がCTX-M-1とCTX-M-9の両方に関連していた。 結論:この研究は、エジプトからのCTX-M陽性大腸菌分離株に関連するキノロン耐性決定因子QNR、AAC(6 ')-IB-CR、QEP A4の有病率を強調しています。これは、エジプトのプラスミド媒介フルオロキノロン排出ポンプのQEP Aの最初の報告です。
目的:拡張スペクトルβ-ラクタマーゼ(ESBL)生産性の大腸菌におけるプラスミド媒介キノロン抵抗性決定因子QNR、AAC(6 ')-IB-CRおよびQEPの有病率を特徴付けること、およびこれらの決定要因のCTX-MグループとのCTX-Mグループの関連を決定する。 材料と方法:CLSIに従って寒天希釈技術を使用して、70の大腸菌臨床分離株に対する15の抗菌剤のMICが決定されました。QNRA、QNRB、QNRS、AAC(6 ')-IB、QEP、およびCTX-M遺伝子のスクリーニングは、PCR増幅とDNAシーケンスによって実行されました。硬化を使用して、QNR、AAC(6 ')-IB、QEP、またはESBLエンコード遺伝子がプラスミド上にあるかどうかを確認しました。 結果:70の大腸菌臨床分離株のうち、61は少なくとも1つの抗生物質に耐性があり、16(22.8%)が多剤耐性、30(42%)がESBL生産者でした。30のESBL生産者のうち、大腸菌分離株のうち、8人(26.6%)がQNR遺伝子に対して陽性であり、QNRA1-、QNRB1およびQNRS1タイプの遺伝子は、それぞれ5(16.6%)、7(23.3%)および5(16.6%)分離株で単独または組み合わせて検出されました。7つの(23.3%)分離株はAAC(6 ')-IB-CRで陽性であり、QEPA4に対して陽性である2つ(6.6%)の分離株のみが陽性でした。硬化時のすべてのプラスミドの喪失は、QNR、AAC(6 ')-IB-CR、QEP A4、およびESBLエンコード遺伝子が常にプラスミド媒介であることを示唆しました。8 QNR陽性分離株のうち5はCTX-M-1とCTX-M-9の両方に関連していたが、6 AAC(6 ')-IB-CR陽性分離株から2がCTX-M-1とCTX-M-9の両方に関連していた。 結論:この研究は、エジプトからのCTX-M陽性大腸菌分離株に関連するキノロン耐性決定因子QNR、AAC(6 ')-IB-CR、QEP A4の有病率を強調しています。これは、エジプトのプラスミド媒介フルオロキノロン排出ポンプのQEP Aの最初の報告です。
PURPOSE: To characterize the prevalence of plasmid-mediated quinolone resistance determinants qnr, aac(6')-Ib-cr and qep in extended-spectrum β-lactamase (ESBL) -producing E. coli and to determine the association of these determinants with CTX-M group in Cairo, Egypt. MATERIALS AND METHODS: MICs of 15 antimicrobial agents against 70 E. coli clinical isolates were determined using agar dilution technique according to CLSI. Screening for the qnrA, qnrB, qnrS, aac(6')-Ib, qep and CTX-M genes was carried out by PCR amplification and DNA sequencing. Curing was used to confirm whether qnr, aac(6')-Ib, qep or ESBL-encoding genes were located on plasmids. RESULTS: Out of 70 E. coli clinical isolates, 61 were resistant to at least one antibiotic, 16 (22.8%) were multidrug resistant and 30 (42%) were ESBL producers. Out of 30 ESBL producers E. coli isolates, 8 (26.6%) were positive for qnr genes, and the qnrA1-, qnrB1-and qnrS1-type genes were detected alone or in combination in 5 (16.6%), 7 (23.3%) and 5 (16.6%) isolates, respectively. Seven (23.3%) isolates were positive for aac(6')-Ib-cr and only two (6.6%) isolates were positive for qepA4. Loss of all plasmids upon curing suggested that qnr, aac(6')-Ib-cr , qep A4 and ESBL-encoding genes were always plasmid mediated. Out of 8 Qnr positive isolates 5 were associated with both CTX-M-1 and CTX-M-9 while 2 from 6 aac(6')-Ib-cr positive isolates were associated with both CTX-M-1 and CTX-M-9. CONCLUSIONS: This study highlights the prevalence of quinolone resistance determinants qnr, aac(6')-Ib-cr , qep A4 associated with CTX-M positive E. coli isolates from Egypt. This is the first report of the plasmid mediated fluoroquinolone efflux pump, Qep A from Egypt.
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