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目的:3Dポリ(ε-カプロラクトン)(PCL)ナノファイバー足場を調製し、間葉系幹細胞(MSC)の播種、増殖、分化、および移動に使用した使用をテストしました。 材料と方法:3Dナノファイバーは、一般的なエレクトロスピニングのための特別なコレクターを使用して準備されました。同時に、クラシックなプレーンコレクターを使用して、2D PCLナノファイバー層を準備しました。両方の足場にMSCを播種し、生物学的にテストしました。MSCの接着、移動、増殖、骨形成分化が調査されました。 結果:3D PCL足場は、より良い生体力学的特性、すなわちより大きな弾力性とストレスや緊張に対する耐性を持つことで特徴付けられたため、この足場は組織工学に広範な用途を見つけることができます。明らかに、2D足場のナノファイバー層により、MSCが立体構造を介して移動するのが妨げられましたが、細胞は3D足場を介して自由に浸透しました。3DナノファイバーPCL層へのMSC接着は、2D足場(P <0.05)よりも統計的に一般的であり、シード後2または3週間のMSCの増殖と生存率も3D足場で大きかった。さらに、3D PCL足場は、強化されたMSC骨形成分化を表示することによっても特徴付けられました。 結論:3D PCLナノファイバー足場を使用して観察されたすべての肯定的な効果は、細胞が利用できるより大きな繊維表面積に関連しているという結論を導き出します。したがって、提案されているナノファイバー層の3D構造は、組織工学と再生医療に幅広い用途を見つけるでしょう。
目的:3Dポリ(ε-カプロラクトン)(PCL)ナノファイバー足場を調製し、間葉系幹細胞(MSC)の播種、増殖、分化、および移動に使用した使用をテストしました。 材料と方法:3Dナノファイバーは、一般的なエレクトロスピニングのための特別なコレクターを使用して準備されました。同時に、クラシックなプレーンコレクターを使用して、2D PCLナノファイバー層を準備しました。両方の足場にMSCを播種し、生物学的にテストしました。MSCの接着、移動、増殖、骨形成分化が調査されました。 結果:3D PCL足場は、より良い生体力学的特性、すなわちより大きな弾力性とストレスや緊張に対する耐性を持つことで特徴付けられたため、この足場は組織工学に広範な用途を見つけることができます。明らかに、2D足場のナノファイバー層により、MSCが立体構造を介して移動するのが妨げられましたが、細胞は3D足場を介して自由に浸透しました。3DナノファイバーPCL層へのMSC接着は、2D足場(P <0.05)よりも統計的に一般的であり、シード後2または3週間のMSCの増殖と生存率も3D足場で大きかった。さらに、3D PCL足場は、強化されたMSC骨形成分化を表示することによっても特徴付けられました。 結論:3D PCLナノファイバー足場を使用して観察されたすべての肯定的な効果は、細胞が利用できるより大きな繊維表面積に関連しているという結論を導き出します。したがって、提案されているナノファイバー層の3D構造は、組織工学と再生医療に幅広い用途を見つけるでしょう。
OBJECTIVES: We prepared 3D poly (ε-caprolactone) (PCL) nanofibre scaffolds and tested their use for seeding, proliferation, differentiation and migration of mesenchymal stem cell (MSCs). MATERIALS AND METHODS: 3D nanofibres were prepared using a special collector for common electrospinning; simultaneously, a 2D PCL nanofibre layer was prepared using a classic plain collector. Both scaffolds were seeded with MSCs and biologically tested. MSC adhesion, migration, proliferation and osteogenic differentiation were investigated. RESULTS: The 3D PCL scaffold was characterized by having better biomechanical properties, namely greater elasticity and resistance against stress and strain, thus this scaffold will be able to find broad applications in tissue engineering. Clearly, while nanofibre layers of the 2D scaffold prevented MSCs from migrating through the conformation, cells infiltrated freely through the 3D scaffold. MSC adhesion to the 3D nanofibre PCL layer was also statistically more common than to the 2D scaffold (P < 0.05), and proliferation and viability of MSCs 2 or 3 weeks post-seeding, were also greater on the 3D scaffold. In addition, the 3D PCL scaffold was also characterized by displaying enhanced MSC osteogenic differentiation. CONCLUSIONS: We draw the conclusion that all positive effects observed using the 3D PCL nanofibre scaffold are related to the larger fibre surface area available to the cells. Thus, the proposed 3D structure of the nanofibre layer will find a wide array of applications in tissue engineering and regenerative medicine.
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