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背景：Kleihauer-Betkeテスト（KBT）による胎児の出血（FMH）評価は迅速ですが、半定量的であり、誤った肯定的な結果に対して責任を負います。 目的：大規模なFMH、産科リスク要因、または技術的な問題を抱える37人の患者のフローサイトメトリー（FC）の定量化とKBTによって推定されたFMHを比較する。 方法：KBT後のFCによる分析のために母体の血液を送信しました。抗ヘイモグロビンF（HBF）、抗Dおよび組み合わせた抗HBF/抗炭酸脱水酵素（CA）を含むさまざまな試薬を使用しました。 結果：妊娠後期に胎児死または重度の新生児貧血を引き起こす大規模なFMH（> 100 mLの胎児細胞）の8例がFCによって確認されました。抗HBF FCは、母体F細胞と胎児細胞を特定しました。場合によっては、これらの赤血球集団は合併しましたが、F細胞のみに標識する抗CAによって区別される可能性があります。KBTを使用して、12人の患者に対して偽陽性のFMH結果が得られました。12人の患者は、FCによって母体F細胞であることが示された細胞を強く染色しました。これらすべての患者はF細胞（総赤細胞の5％以上）が増加しましたが、FMHの患者の16％とドナーの22％のみがF細胞を上昇させていました。対照的に、抗D FCは、d胎児細胞が弱い1人を除く15人のd陰性患者すべてで、D陽性FMHを迅速かつ迅速で定量化しました。4つのサンプルの白血球は、抗Dをさまざまに結合し、誤って高いFMHを与えましたが、組み合わせた抗D/抗CD45を使用してFC分析から排除することができました。 結論：FCによる抗Dを使用したFMH定量は、母体サンプルの大部分に適しており、抗D予防の正確な標的投与を可能にする可能性があります。
背景：Kleihauer-Betkeテスト（KBT）による胎児の出血（FMH）評価は迅速ですが、半定量的であり、誤った肯定的な結果に対して責任を負います。 目的：大規模なFMH、産科リスク要因、または技術的な問題を抱える37人の患者のフローサイトメトリー（FC）の定量化とKBTによって推定されたFMHを比較する。 方法：KBT後のFCによる分析のために母体の血液を送信しました。抗ヘイモグロビンF（HBF）、抗Dおよび組み合わせた抗HBF/抗炭酸脱水酵素（CA）を含むさまざまな試薬を使用しました。 結果：妊娠後期に胎児死または重度の新生児貧血を引き起こす大規模なFMH（> 100 mLの胎児細胞）の8例がFCによって確認されました。抗HBF FCは、母体F細胞と胎児細胞を特定しました。場合によっては、これらの赤血球集団は合併しましたが、F細胞のみに標識する抗CAによって区別される可能性があります。KBTを使用して、12人の患者に対して偽陽性のFMH結果が得られました。12人の患者は、FCによって母体F細胞であることが示された細胞を強く染色しました。これらすべての患者はF細胞（総赤細胞の5％以上）が増加しましたが、FMHの患者の16％とドナーの22％のみがF細胞を上昇させていました。対照的に、抗D FCは、d胎児細胞が弱い1人を除く15人のd陰性患者すべてで、D陽性FMHを迅速かつ迅速で定量化しました。4つのサンプルの白血球は、抗Dをさまざまに結合し、誤って高いFMHを与えましたが、組み合わせた抗D/抗CD45を使用してFC分析から排除することができました。 結論：FCによる抗Dを使用したFMH定量は、母体サンプルの大部分に適しており、抗D予防の正確な標的投与を可能にする可能性があります。
BACKGROUND: Fetomaternal haemorrhage (FMH) assessment by the Kleihauer-Betke test (KBT) is rapid but semi-quantitative and liable to false positive results. OBJECTIVES: To compare FMH estimated by KBT with flow cytometry (FC) quantitation for 37 patients with massive FMH, obstetric risk factors or technical problems. METHODS: Maternal blood was sent for analysis by FC after KBT. A variety of reagents including anti-haemoglobin F (HbF), anti-D and combined anti-HbF/anti-carbonic anhydrase (CA) were used. RESULTS: Eight cases of massive FMH (>100 mL fetal cells) causing fetal death or severe neonatal anaemia in late gestation were confirmed by FC. Anti-HbF FC identified maternal F cells and fetal cells. In some cases these red cell populations merged but they could be differentiated by anti-CA, labelling F cells only. Using KBT, false positive FMH results were obtained for 12 patients, who had strongly stained cells that were then shown by FC to be maternal F cells. All these patients had increased F cells (>5% of total red cells) whereas only 16% of patients with FMH and 22% of donors had elevated F cells. In contrast, anti-D FC was simple and rapid, quantitating D-positive FMH in all 15 D-negative patients except one with massive FMH of weak D fetal cells. Leucocytes in four samples bound anti-D, variably, giving erroneously high FMH, but they could be eliminated from FC analysis using combined anti-D/anti-CD45. CONCLUSION: FMH quantitation using anti-D by FC is suitable for the majority of maternal samples and could enable accurate targeted dosing of anti-D prophylaxis.
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