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鶏C-MYC遺伝子は、腫瘍リンパ腫のプロビラル挿入変異の標的であり、いくつかのウイルス性癌遺伝子を生成するために形質導入されていますが、そのエクソンの境界は安全に確立されていません。そのmRNAを生成するために必要な鶏C-Myc遺伝子のランドマークを定義するために、RNase保護アッセイとcDNAクローンを使用して、通常の鶏肉胚からのC-Myc mRNAを分析し、2つのブルサルリンパ腫と、鳥類のウイルスウイルスの下流の鳥類ウイルスの下流にある鳥類のウイルスプロビュアンエイブス産の鳥類dowsis avis obir avirs avirs whointas avirsの2つの腫瘍リンパ腫：LL6から分析しました。C-MYCコーディング領域。正常なC-MYC mRNAの2つの開始部位は、標準的なTATAおよびCAATシーケンスを欠いているGCに富む領域の下流で、7塩基が離れています。最初のエクソンには、全長の2つのオープンリーディングフレームがありますが、イニシエーターメチオニンコドンはありません。最初のイントロンの境界にあるスプライスドナーおよびアクセプター部位は、LL6 C-MYC cDNAクローンのシーケンスをゲノムDNA配列と比較することにより割り当てられ、正常およびLL6由来MRNAによる標識RNAプローブのRNase保護によって確認されました。2つの潜在的なポリデニル化シグナルは、3番目のエクソンのC-MYCコーディング領域の下流約250および400塩基がありますが、正常細胞とLL7腫瘍の両方で使用されるより遠位シグナルのみが使用されます。LL6腫瘍におけるプロビラル統合は、プロビラルの長末端繰り返しにおけるこの転写産物のポリアデニル化を占める本物のC-MYCポリデニル化信号の上流で発生しました。
鶏C-MYC遺伝子は、腫瘍リンパ腫のプロビラル挿入変異の標的であり、いくつかのウイルス性癌遺伝子を生成するために形質導入されていますが、そのエクソンの境界は安全に確立されていません。そのmRNAを生成するために必要な鶏C-Myc遺伝子のランドマークを定義するために、RNase保護アッセイとcDNAクローンを使用して、通常の鶏肉胚からのC-Myc mRNAを分析し、2つのブルサルリンパ腫と、鳥類のウイルスウイルスの下流の鳥類ウイルスの下流にある鳥類のウイルスプロビュアンエイブス産の鳥類dowsis avis obir avirs avirs whointas avirsの2つの腫瘍リンパ腫：LL6から分析しました。C-MYCコーディング領域。正常なC-MYC mRNAの2つの開始部位は、標準的なTATAおよびCAATシーケンスを欠いているGCに富む領域の下流で、7塩基が離れています。最初のエクソンには、全長の2つのオープンリーディングフレームがありますが、イニシエーターメチオニンコドンはありません。最初のイントロンの境界にあるスプライスドナーおよびアクセプター部位は、LL6 C-MYC cDNAクローンのシーケンスをゲノムDNA配列と比較することにより割り当てられ、正常およびLL6由来MRNAによる標識RNAプローブのRNase保護によって確認されました。2つの潜在的なポリデニル化シグナルは、3番目のエクソンのC-MYCコーディング領域の下流約250および400塩基がありますが、正常細胞とLL7腫瘍の両方で使用されるより遠位シグナルのみが使用されます。LL6腫瘍におけるプロビラル統合は、プロビラルの長末端繰り返しにおけるこの転写産物のポリアデニル化を占める本物のC-MYCポリデニル化信号の上流で発生しました。
The chicken c-myc gene is the target for proviral insertion mutations in bursal lymphomas and has been transduced to generate several viral oncogenes, but the boundaries of its exons have not been securely established. To define the landmarks of the chicken c-myc gene necessary to produce its mRNA, we used an RNase protection assay and a cDNA clone to analyze the c-myc mRNAs from normal chicken embryos and from two bursal lymphomas: LL6, which contains an avian leukosis virus provirus downstream of the c-myc coding region, and LL7, which contains an avian leukosis virus provirus upstream of the c-myc coding region. Two initiation sites for normal c-myc mRNA are less than 7 bases apart, downstream of a GC-rich region lacking canonical TATA and CAAT sequences. The first exon has two open reading frames for the entire length but no initiator methionine codons. The splice donor and acceptor sites at the boundary of the first intron were assigned by comparing a sequence of an LL6 c-myc cDNA clone with a genomic DNA sequence and confirmed by RNase protection of labeled RNA probes by normal and LL6-derived mRNAs. Two potential polyadenylation signals are located approximately 250 and 400 bases downstream of the c-myc coding region in the third exon, but only the more distal signal is utilized in both normal cells and the LL7 tumor. The proviral integration in the LL6 tumor occurred upstream of the authentic c-myc polyadenylation signal accounting for polyadenylation of this transcript in the proviral long terminal repeat.
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