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目的:黄色ブドウ球菌(黄色ブドウ球菌)の表現型と遺伝子型をエリスロマイシンおよびクリンダマイシンに耐えられ、検出方法を比較して、抗生物質の臨床的合理的使用を導くために結果を正確に報告するために検出方法を比較する。 方法:Dテストを使用して、エリスロマイシンから耐性耐性S. aureusの表現型を検出しました。そして、2つの方法(自動化された機器とディスク拡散)の結果を分析しました。すべての株は、ヘテロ抵抗の表現型および遺伝子型の安定性を検証するために、50世代にわたって継続的に継続的に継続的に継続的でした。ERMA、ERMC、およびMSRA遺伝子は、マルチプレックスポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって増幅されました。 結果:95のエリスロマイシン感受性株のうち、エリスロマイシンからヘテロ耐性70株(73.7%)がありました。一次70株はすべて、Vitek2コンパクトのGP-67のカードで、すべてエリスロマイシン(MIC≤0.25µg/mL)およびクリンダマイシン(MIC≤0.25µg/mL)の感受性でした。Dテストでは、結果を観察するのが困難でした。継続された70株はすべて、エリスロマイシン(MIC> 8 µg/ml)に対して耐性があり、Clindamycin(MIC≤0.25µg/mL)の影響を受けやすく、V ViteK2コンパクトのGP-67のカードでD検定が陽性でした。ヘレロ - エリスロマイシン耐性株の一次および50(TH)生成は、感受性試験結果で安定していた。プライマリと50(Th)の生成株はすべて、PCRの結果を伴うERMA遺伝子陽性、ERMCおよびMSRA陰性でした。 結論:ヘトレオ - エリスロマイシン耐性S.黄斑株の表現型と遺伝子型は安定していた。Vitek2コンパクトによる検出の逃した場合、エリスロマイシンとクリンダマイシンの適切な使用に影響を与える可能性があります。実験室の技術者は、ディスク拡散法によりエリスロマイシン感受性株を特定する必要があります。
目的:黄色ブドウ球菌(黄色ブドウ球菌)の表現型と遺伝子型をエリスロマイシンおよびクリンダマイシンに耐えられ、検出方法を比較して、抗生物質の臨床的合理的使用を導くために結果を正確に報告するために検出方法を比較する。 方法:Dテストを使用して、エリスロマイシンから耐性耐性S. aureusの表現型を検出しました。そして、2つの方法(自動化された機器とディスク拡散)の結果を分析しました。すべての株は、ヘテロ抵抗の表現型および遺伝子型の安定性を検証するために、50世代にわたって継続的に継続的に継続的に継続的でした。ERMA、ERMC、およびMSRA遺伝子は、マルチプレックスポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって増幅されました。 結果:95のエリスロマイシン感受性株のうち、エリスロマイシンからヘテロ耐性70株(73.7%)がありました。一次70株はすべて、Vitek2コンパクトのGP-67のカードで、すべてエリスロマイシン(MIC≤0.25µg/mL)およびクリンダマイシン(MIC≤0.25µg/mL)の感受性でした。Dテストでは、結果を観察するのが困難でした。継続された70株はすべて、エリスロマイシン(MIC> 8 µg/ml)に対して耐性があり、Clindamycin(MIC≤0.25µg/mL)の影響を受けやすく、V ViteK2コンパクトのGP-67のカードでD検定が陽性でした。ヘレロ - エリスロマイシン耐性株の一次および50(TH)生成は、感受性試験結果で安定していた。プライマリと50(Th)の生成株はすべて、PCRの結果を伴うERMA遺伝子陽性、ERMCおよびMSRA陰性でした。 結論:ヘトレオ - エリスロマイシン耐性S.黄斑株の表現型と遺伝子型は安定していた。Vitek2コンパクトによる検出の逃した場合、エリスロマイシンとクリンダマイシンの適切な使用に影響を与える可能性があります。実験室の技術者は、ディスク拡散法によりエリスロマイシン感受性株を特定する必要があります。
OBJECTIVE: To explore the phenotypes and genotypes of Staphylococcus aureus (S. aureus) hetero-resistant to erythromycin and clindamycin and compare their detection methods so as to report results accurately to guide clinical rational use of antibiotics. METHODS: D test was used to detect the phenotypes of S. aureus hetero-resistant to erythromycin. And then the results of two methods (automated instrument and disk diffusion) were analyzed. All strains were continuously passaged for 50 generations to verify the phenotypic and genotypic stability of hetero-resistance. ErmA, ermC and msrA genes were amplified by multiplex polymerase chain reaction (PCR). RESULTS: Among 95 erythromycin-sensitive strains, there were 70 strains hetero-resistant to erythromycin (73.7%). The primary 70 strains were all susceptive to erythromycin (MIC ≤ 0.25 µg/ml) and clindamycin (MIC ≤ 0.25 µg/ml) with the cards of GP-67 of VITEK2 Compact. With D tests, the results were difficult to observe. The passaged 70 strains were all resistant to erythromycin (MIC >8 µg/ml) and susceptible to clindamycin (MIC ≤ 0.25 µg/ml) and D test positive with the cards of GP-67 of VITEK2 Compact. The primary and 50(th) generation of herero-erythromycin resistant strains were stable in susceptibility test results. The primary and the 50(th)th generation strains were all ermA gene positive, ermC and msrA negative with PCR results. CONCLUSIONS: The phenotypes and genotypes of hetreo-erythromycin resistant S. aureus strains were stable. Missed detection with VITEK2 Compact may affect the proper use of erythromycin and clindamycin. Laboratory technicians should identify the erythromycin-susceptible strains by disk diffusion method.
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