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背景：非癒しの傷は重大な健康負担です。STEMおよび前駆細胞は、創傷の修復と再生を促進する可能性があります。根本的なメカニズムは不明のままですが、ヒト羊膜は創傷治癒を促進する上で有効性を実証しています。皮膚虚血のマウスモデルで造血前駆細胞を外科的に移植された移植片に造血細胞を補充する能力について、脱水したヒト羊膜絨毛膜（DHACM）をテストしました。 方法：DHACMは、野生型マウスまたは緑色蛍光タンパク質（GFP） +レポーターマウスに外科的に麻痺したマウスのいずれかで、皮膚の上昇（虚血刺激）の下で皮下移植されました。コントロールの無細胞真皮マトリックス、インプラントのない皮膚の高架、および通常の皮膚の皮膚がコントロールとして使用されました。創傷組織を採取し、組織学およびフローサイトメトリー分析のために処理しました。 結果：埋め込まれたDHACMSは、コントロールと比較して有意に多くの前駆細胞を動員し（*p <0.05）、マトリックス内にCD34 +前駆細胞を組み込んだin vivo SDF-1発現を示しました。Parabiosisモデリングにより、動員細胞の循環起点が確認され、前駆細胞マーカーが共発現し、移植されたマトリックス内の血管新生の病巣に局在していました。 結論：要約すると、DHACMは、おそらく間質由来の因子（SDF-1）発現のために、循環前駆細胞を効果的に募集します。募集された細胞は「幹」のマーカーを発現し、血管新生の部位に局在し、慢性創傷の治療におけるヒト羊膜の臨床効果のための部分的なメカニズムを提供します。
背景：非癒しの傷は重大な健康負担です。STEMおよび前駆細胞は、創傷の修復と再生を促進する可能性があります。根本的なメカニズムは不明のままですが、ヒト羊膜は創傷治癒を促進する上で有効性を実証しています。皮膚虚血のマウスモデルで造血前駆細胞を外科的に移植された移植片に造血細胞を補充する能力について、脱水したヒト羊膜絨毛膜（DHACM）をテストしました。 方法：DHACMは、野生型マウスまたは緑色蛍光タンパク質（GFP） +レポーターマウスに外科的に麻痺したマウスのいずれかで、皮膚の上昇（虚血刺激）の下で皮下移植されました。コントロールの無細胞真皮マトリックス、インプラントのない皮膚の高架、および通常の皮膚の皮膚がコントロールとして使用されました。創傷組織を採取し、組織学およびフローサイトメトリー分析のために処理しました。 結果：埋め込まれたDHACMSは、コントロールと比較して有意に多くの前駆細胞を動員し（*p <0.05）、マトリックス内にCD34 +前駆細胞を組み込んだin vivo SDF-1発現を示しました。Parabiosisモデリングにより、動員細胞の循環起点が確認され、前駆細胞マーカーが共発現し、移植されたマトリックス内の血管新生の病巣に局在していました。 結論：要約すると、DHACMは、おそらく間質由来の因子（SDF-1）発現のために、循環前駆細胞を効果的に募集します。募集された細胞は「幹」のマーカーを発現し、血管新生の部位に局在し、慢性創傷の治療におけるヒト羊膜の臨床効果のための部分的なメカニズムを提供します。
BACKGROUND: Nonhealing wounds are a significant health burden. Stem and progenitor cells can accelerate wound repair and regeneration. Human amniotic membrane has demonstrated efficacy in promoting wound healing, though the underlying mechanisms remain unknown. A dehydrated human amnion chorion membrane (dHACM) was tested for its ability to recruit hematopoietic progenitor cells to a surgically implanted graft in a murine model of cutaneous ischemia. METHODS: dHACM was subcutaneously implanted under elevated skin (ischemic stimulus) in either wild-type mice or mice surgically parabiosed to green fluorescent protein (GFP) + reporter mice. A control acellular dermal matrix, elevated skin without an implant, and normal unwounded skin were used as controls. Wound tissue was harvested and processed for histology and flow cytometric analysis. RESULTS: Implanted dHACMs recruited significantly more progenitor cells compared with controls (*P < 0.05) and displayed in vivo SDF-1 expression with incorporation of CD34 + progenitor cells within the matrix. Parabiosis modeling confirmed the circulatory origin of recruited cells, which coexpressed progenitor cell markers and were localized to foci of neovascularization within implanted matrices. CONCLUSIONS: In summary, dHACM effectively recruits circulating progenitor cells, likely because of stromal derived factor 1 (SDF-1) expression. The recruited cells express markers of "stemness" and localize to sites of neovascularization, providing a partial mechanism for the clinical efficacy of human amniotic membrane in the treatment of chronic wounds.
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