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はじめに：MRSA集団のダイナミクスは大きな変化を遂げています。このため、どのクローンが私たちの院内環境で循環しているかを知ることが重要です。 材料と方法：1年間に、過去の病院または医療接触（病院発症MRSA（HO-MRSA）と呼ばれる）患者から臨床サンプルから合計118のMRSA分離株が収集されました。感受性検査は、ディスクの拡散と微量希釈によって行われました。耐性遺伝子の存在と病原性因子をPCRによってテストしました。すべての分離株は、SCCMEC、SPA、およびAGRタイピングによってタイプされました。PFGEとMLSTは、それらの選択に適用されました。 結果：83個のHO-MRSA分離株（70.3％）は、マクロライド - リンコサミド - ストレプトグラム菌B群に含まれる抗生物質に耐性がありました。これらの分離株の中で、M表現型が最も頻繁でした（73.5％）。HO-MRSA分離株の17件（90.7％）は、アミノグリコシド耐性を示しました。組み合わせAAC（6 '）-IE-APH（2″）-IA+ANT（4'）-IA遺伝子が最も頻繁でした（22.4％）。HO-MRSA分離株のテトラサイクリン抵抗率は低かった（3.4％）が、高レベルのムピロシン耐性が観察された（25.4％）。HO-MRSA分離株のほとんど（約90％）は、SCCMEC型IVCおよびAGR型IIを示しました。15の無関係なパルソタイプが特定されました。CC5は最も一般的（88.1％）で、続いてCC8（5.9％）、CC22（2.5％）、CC398（2.5％）、CC1（0.8％）が続きました。 結論：CC5/ST125/T067系統が最も頻繁でした。この系統は、アミノグリコシド抵抗性に関連しており、マクロライド耐性を伴う程度は低かった。EMRSA-15（CC22/ST22）としての国際クローンの存在、CC5/ST228としてのヨーロッパクローン、CC1またはCC8に関連するコミュニティクローン、およびCC398としての畜産関連クローンは、低いパーセントで観察されました。
はじめに：MRSA集団のダイナミクスは大きな変化を遂げています。このため、どのクローンが私たちの院内環境で循環しているかを知ることが重要です。 材料と方法：1年間に、過去の病院または医療接触（病院発症MRSA（HO-MRSA）と呼ばれる）患者から臨床サンプルから合計118のMRSA分離株が収集されました。感受性検査は、ディスクの拡散と微量希釈によって行われました。耐性遺伝子の存在と病原性因子をPCRによってテストしました。すべての分離株は、SCCMEC、SPA、およびAGRタイピングによってタイプされました。PFGEとMLSTは、それらの選択に適用されました。 結果：83個のHO-MRSA分離株（70.3％）は、マクロライド - リンコサミド - ストレプトグラム菌B群に含まれる抗生物質に耐性がありました。これらの分離株の中で、M表現型が最も頻繁でした（73.5％）。HO-MRSA分離株の17件（90.7％）は、アミノグリコシド耐性を示しました。組み合わせAAC（6 '）-IE-APH（2″）-IA+ANT（4'）-IA遺伝子が最も頻繁でした（22.4％）。HO-MRSA分離株のテトラサイクリン抵抗率は低かった（3.4％）が、高レベルのムピロシン耐性が観察された（25.4％）。HO-MRSA分離株のほとんど（約90％）は、SCCMEC型IVCおよびAGR型IIを示しました。15の無関係なパルソタイプが特定されました。CC5は最も一般的（88.1％）で、続いてCC8（5.9％）、CC22（2.5％）、CC398（2.5％）、CC1（0.8％）が続きました。 結論：CC5/ST125/T067系統が最も頻繁でした。この系統は、アミノグリコシド抵抗性に関連しており、マクロライド耐性を伴う程度は低かった。EMRSA-15（CC22/ST22）としての国際クローンの存在、CC5/ST228としてのヨーロッパクローン、CC1またはCC8に関連するコミュニティクローン、およびCC398としての畜産関連クローンは、低いパーセントで観察されました。
INTRODUCTION: MRSA population dynamics is undergoing significant changes, and for this reason it is important to know which clones are circulating in our nosocomial environment. MATERIALS AND METHODS: A total of 118 MRSA isolates were collected from clinical samples from patients with previous hospital or healthcare contact (named as hospital-onset MRSA (HO-MRSA)) during a one year period. Susceptibility testing was performed by disk diffusion and microdilution. The presence of resistance genes and virulence factors were tested by PCR. All isolates were typed by SCCmec, spa and agr typing. PFGE and MLST were applied to a selection of them. RESULTS: Eighty-three HO-MRSA isolates (70.3%) were resistant to any antibiotic included in the macrolide-lincosamide-streptogramin B group. Among these isolates, the M phenotype was the most frequent (73.5%). One hundred and seven of HO-MRSA isolates (90.7%) showed aminoglycoside resistance. The combination aac(6')-Ie-aph(2″)-Ia+ant(4')-Ia genes was the most frequent (22.4%). Tetracycline resistance rates in HO-MRSA isolates were low (3.4%), although a high level of mupirocin resistance was observed (25.4%). Most of the HO-MRSA isolates (approximately 90%) showed SCCmec type IVc and agr type II. Fifteen unrelated pulsotypes were identified. CC5 was the most prevalent (88.1%), followed by CC8 (5.9%), CC22 (2.5%), CC398 (2.5%) and CC1 (0.8%). CONCLUSION: CC5/ST125/t067 lineage was the most frequent. This lineage was related to aminoglycoside resistance, and to a lesser extent, with macrolide resistance. The presence of international clones as EMRSA-15 (CC22/ST22), European clones as CC5/ST228, community clones related to CC1 or CC8 and livestock associated clones, as CC398, were observed in a low percentage.
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