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目的：Streptococcus AgalactiaeにおけるCatq媒介クロラムフェニコール耐性の遺伝的基礎を調査する。 方法：Catq陽性クロラムフェニコール耐性S. agalactiae（SAG236およびSAG403）の2つの臨床株が最近分離され（MLST、PFGEパルソタイプ、capsular膜タイプ）、および表現型および遺伝子型アプローチによって調査された抗生物質耐性がタイプされました。いくつかの分子法（PCRマッピング、制限アッセイ、南ブロット、シーケンスおよびシーケンス分析、夫婦移植アッセイ）を使用して、CATQの遺伝的コンテキストを決定し、分離株で検出された遺伝的要素を特徴付けました。 結果：SAG236とSAG403は同じST（ST19）を共有しましたが、異なるcaps型（IIIとV）とパルソタイプを示しました。どちらも、マクロライド耐性遺伝子MEF（I）およびERM（TR）とテトラサイクリン耐性遺伝子Tet（M）を抱いていました。したがって、それらはクロラムフェニコール、エリスロマイシン、テトラサイクリンに耐性がありました。CATQとMEF（I）は、SAG236とSAG403で区別できないIQモジュールに関連付けられていました。交配アッセイでは、クロラムフェニコールとエリスロマイシン耐性が低周波数で、SAG236からのみ移動可能であることが証明されました。トランスジュジュガンは、CATQとMEF（I）だけでなく、ERM（TR）も運ばれ、モバイル要素内の3つの抵抗遺伝子のリンクを示唆しています。新しい要素（指定されたICESAG236、〜110 kb）は、最初に異なる連鎖球菌種で記載されている2つの統合要素と共役要素（ICE）の組換えに起因します。および肺炎連鎖球菌ICESPN529IQ、プロトタイプIQモジュールを運ぶ。 結論：これらの発見は、広範囲にわたる連鎖球菌氷がモザイクを形成し、その多様性を高め、拡大し、宿主範囲を広げ、新しい貨物遺伝子を運ぶ可能性があるという概念を強化します。
目的：Streptococcus AgalactiaeにおけるCatq媒介クロラムフェニコール耐性の遺伝的基礎を調査する。 方法：Catq陽性クロラムフェニコール耐性S. agalactiae（SAG236およびSAG403）の2つの臨床株が最近分離され（MLST、PFGEパルソタイプ、capsular膜タイプ）、および表現型および遺伝子型アプローチによって調査された抗生物質耐性がタイプされました。いくつかの分子法（PCRマッピング、制限アッセイ、南ブロット、シーケンスおよびシーケンス分析、夫婦移植アッセイ）を使用して、CATQの遺伝的コンテキストを決定し、分離株で検出された遺伝的要素を特徴付けました。 結果：SAG236とSAG403は同じST（ST19）を共有しましたが、異なるcaps型（IIIとV）とパルソタイプを示しました。どちらも、マクロライド耐性遺伝子MEF（I）およびERM（TR）とテトラサイクリン耐性遺伝子Tet（M）を抱いていました。したがって、それらはクロラムフェニコール、エリスロマイシン、テトラサイクリンに耐性がありました。CATQとMEF（I）は、SAG236とSAG403で区別できないIQモジュールに関連付けられていました。交配アッセイでは、クロラムフェニコールとエリスロマイシン耐性が低周波数で、SAG236からのみ移動可能であることが証明されました。トランスジュジュガンは、CATQとMEF（I）だけでなく、ERM（TR）も運ばれ、モバイル要素内の3つの抵抗遺伝子のリンクを示唆しています。新しい要素（指定されたICESAG236、〜110 kb）は、最初に異なる連鎖球菌種で記載されている2つの統合要素と共役要素（ICE）の組換えに起因します。および肺炎連鎖球菌ICESPN529IQ、プロトタイプIQモジュールを運ぶ。 結論：これらの発見は、広範囲にわたる連鎖球菌氷がモザイクを形成し、その多様性を高め、拡大し、宿主範囲を広げ、新しい貨物遺伝子を運ぶ可能性があるという概念を強化します。
OBJECTIVES: To investigate the genetic basis of catQ-mediated chloramphenicol resistance in Streptococcus agalactiae. METHODS: Two clinical strains of catQ-positive chloramphenicol-resistant S. agalactiae (Sag236 and Sag403) were recently isolated, typed (MLST, PFGE pulsotypes, capsular types) and their antibiotic resistances investigated by phenotypic and genotypic approaches. Several molecular methods (PCR mapping, restriction assays, Southern blotting, sequencing and sequence analysis, conjugal transfer assays) were used to determine the genetic context of catQ and characterize a genetic element detected in the isolates. RESULTS: Sag236 and Sag403 shared the same ST (ST19), but exhibited a different capsular type (III and V, respectively) and pulsotype. Both harboured the macrolide resistance genes mef(I) and erm(TR) and the tetracycline resistance gene tet(M). Accordingly, they were resistant to chloramphenicol, erythromycin and tetracycline. catQ and mef(I) were associated in an IQ module that was indistinguishable in Sag236 and Sag403. In mating assays, chloramphenicol and erythromycin resistance proved transferable, at low frequency, only from Sag236. Transconjugants carried not only catQ and mef(I), but also erm(TR), suggesting a linkage of the three resistance genes in a mobile element, which, though seemingly non-mobile, was also detected in Sag403. The new element (designated ICESag236, ∼110 kb) results from recombination of two integrative and conjugative elements (ICEs) originally described in different streptococcal species: S. agalactiae ICESagTR7, carrying erm(TR); and Streptococcus pneumoniae ICESpn529IQ, carrying the prototype IQ module. CONCLUSIONS: These findings strengthen the notion that widespread streptococcal ICEs may form mosaics that enhance their diversity and spread, broaden their host range and carry new cargo genes.
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