微小管アセンブリは、マウス中のプロヌクレイ、核ラミンの獲得、およびDNA合成の形成に必要ですが、海ウニではありません。

マウス中の雄と雌のプロヌクレイの形成には、微小管の集合が必要ですが、施肥ではありません。マウス卵母細胞では、50ミクロムのコルシミドは、in vitro施肥中に母体の減数分裂染​​色体と組み込まれた精子核の脱凝縮を防ぎます。核ラミンは両親のクロマチンセットのいずれにも関連していませんが、PL核末梢抗原であるペリフェリンが両方に現れます。DNA合成は、これらの受精、colcemidに逮捕された卵母細胞では発生しません。この効果は、排卵後の最初の数時間に限定されます。これは、4〜6時間後にコルセミドが核核発達、ラミンの獲得、またはDNA合成を防ぐことができなくなったためです。10ミクロムタキソールによる微小管安定化も、10ミクロムシトカラシンDまたは2.2マイクログラム/mLラトリンキュリンAによるマイクロフィラメント阻害も、これらの核前イベントを防ぐことはありません。これらの薬物は、卵の中心でのプロヌクレイの並置を阻害します。ウニの卵では、コルセミドまたはグリセオフルビン治療は同じ効果をもたらさず、雄の前核形成は核ラミンの付随する蓄積と形成されます。前核形成中の微小管アセンブリの要件の違いは細胞周期に関連している可能性があります。マウスでは、精子は減数分裂細胞質に入りますが、ウニの卵では間期細胞質に入ります。この現象が、精子が減数分裂/有糸分裂細胞質に入るか、間期に入るかに関連している可能性をテストするために、有糸分裂海ウニの卵の紹介が行われました。最初の有糸分裂の紹介中、組み込まれた精子核は、脱同調とラミンを獲得することができません。これらの結果は、マウス施肥中の減数分裂から最初の間期への進行のための微小管アセンブリの要件を示しており、受精および細胞周期中に必要な核建築の変化に細胞骨格が必要であることを示唆しています。

Microtubule assembly is required for the formation of the male and female pronuclei during mouse, but not sea urchin, fertilization. In mouse oocytes, 50 microM colcemid prevents the decondensation of the maternal meiotic chromosomes and of the incorporated sperm nucleus during in vitro fertilization. Nuclear lamins do not associate with either of the parental chromatin sets although peripherin, the Pl nuclear peripheral antigen, appears on both. DNA synthesis does not occur in these fertilized, colcemid-arrested oocytes. This effect is limited to the first hours after ovulation, since colcemid added 4-6 hours later no longer prevents pronuclear development, lamin acquisition, or DNA synthesis. Neither microtubule stabilization with 10 microM taxol nor microfilament inhibition with 10 microM cytochalasin D or 2.2 micrograms/ml latrunculin A prevent these pronuclear events; these drugs will inhibit the apposition of the pronuclei at the egg center. In sea urchin eggs, colcemid or griseofulvin treatment does not result in the same effect and the male pronucleus forms with the attendant accumulation of the nuclear lamins. The differences in the requirement for microtubule assembly during pronucleus formation may be related to the cell cycle: In mice the sperm enters a meiotic cytoplasm, whereas in sea urchin eggs it enters an interphase cytoplasm. Refertilization of mitotic sea urchin eggs was performed to test the possibility that this phenomenon is related to whether the sperm enters a meiotic/mitotic cytoplasm or one at interphase; during refertilization at first mitosis, the incorporated sperm nucleus is unable to decondense and acquire lamins. These results indicate a requirement for microtubule assembly for the progression from meiosis to first interphase during mouse fertilization and suggest that the cytoskeleton is required for changes in nuclear architecture necessary during fertilization and the cell cycle.