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攻撃的な肝臓原発性がんの場合に病的細胞を治療するための新薬の発見は、動物の現在の使用と薬物検査コストを削減するために、新しい治療分子のin vivo反応を予測するために高スループットスクリーニングシステムの同定を課しています。最近、微小/ナノ構造の足場が、従来の2次元培養プレートに関して生物学的ニッチとの類似性が高いため、肝微小環境を再現するために採用されているため、癌細胞活性に関連する分子メカニズムを確実に理解するための新しいin vitroモデルを提供します。本明細書では、ポリカプロラクトンで作られたエレクトロスピン足場の研究をin vitroモデルとして提案し、in vitroモデルとして、細胞外マトリックスの形態学的組織と肝細胞株の共培養-I.E.E.E.E.E。、HEPG2、ヒトの健康肝細胞（HHH）を模倣することを提案します。（3.22±0.42）μmに等しい直径の繊維の微小およびナノスケールの形態学的特徴と（17.84±4.43）nm-of nm-of in in vivoシナリオの繁殖と培養細胞の増殖率の繁殖を繰り返します。HHH細胞と比較して、HEPG2細胞でははるかに低い増殖率が観察されます。さらに、酸化ストレスメカニズムの結果は、主に協同組合の場合に繊維の抗酸化効果を示しているため、肝癌治療における代替治療戦略を探求するための新しいin vitroモデルとしての有望な使用を示唆しています。
攻撃的な肝臓原発性がんの場合に病的細胞を治療するための新薬の発見は、動物の現在の使用と薬物検査コストを削減するために、新しい治療分子のin vivo反応を予測するために高スループットスクリーニングシステムの同定を課しています。最近、微小/ナノ構造の足場が、従来の2次元培養プレートに関して生物学的ニッチとの類似性が高いため、肝微小環境を再現するために採用されているため、癌細胞活性に関連する分子メカニズムを確実に理解するための新しいin vitroモデルを提供します。本明細書では、ポリカプロラクトンで作られたエレクトロスピン足場の研究をin vitroモデルとして提案し、in vitroモデルとして、細胞外マトリックスの形態学的組織と肝細胞株の共培養-I.E.E.E.E.E。、HEPG2、ヒトの健康肝細胞（HHH）を模倣することを提案します。（3.22±0.42）μmに等しい直径の繊維の微小およびナノスケールの形態学的特徴と（17.84±4.43）nm-of nm-of in in vivoシナリオの繁殖と培養細胞の増殖率の繁殖を繰り返します。HHH細胞と比較して、HEPG2細胞でははるかに低い増殖率が観察されます。さらに、酸化ストレスメカニズムの結果は、主に協同組合の場合に繊維の抗酸化効果を示しているため、肝癌治療における代替治療戦略を探求するための新しいin vitroモデルとしての有望な使用を示唆しています。
The discovery of new drugs to treat pathological cells in the case of aggressive liver primary cancer is imposing the identification of high-throughput screening systems to predict the in vivo response of new therapeutic molecules, in order to reduce current use of animals and drug testing costs. Recently, micro/nanostructured scaffolds have been adopted to reproduce the hepatic microenvironment due to their higher similarity to the biological niche with respect to the traditional two-dimensional culture plate, so providing novel in vitro models for reliably understanding molecular mechanisms related to cancer cells activity. Herein, we propose the study of electrospun scaffolds made of polycaprolactone as in vitro model that can mimic the morphological organization of native extracellular matrix and the co-culture of hepatic cell lines-i.e., HepG2, human healthy hepatocytes (HHH). The micro- and nano-scale morphological features of fibers with diameter equal to (3.22 ± 0.42) μm and surface roughness of (17.84 ± 4.43) nm-allow the reproduction of the in vivo scenario influencing the adhesion and proliferation rate of the cultured cells. A much lower proliferation rate is observed for the HepG2 cells compared to the HHH cells, when cultured on the fibrous scaffolds over a time course of 4 weeks. Moreover, results on oxidative stress mechanisms indicate an antioxidant effect of fibers mainly in the case of co-colture, thus suggesting a promising use as new in vitro models to explore alternative therapeutic strategies in hepatocarcinoma treatment.
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