HMSCS/ECSセルシートを使用したPLCL多孔質足場のハイブリッドチューブ状構造の開発と特性評価

組織工学は、自己細胞を生分解性足場に播種することにより、天然組織と同様に成長する可能性を備えた血管移植を提供する代替アプローチを提供します。この研究では、細胞のシートを多孔質管状足場に重ねることにより、結合技術を開発しました。共培養のヒト間葉系幹細胞（HMSC）および内皮細胞（ECS）から調製した細胞シートは、尿細管ポリ（ラクテイド-Co-カプロラクトン）（PLCL）足場の多孔質構造に浸透し、さらに浸透し、さらに浸透性があります。1週間の文化。さらに、管状足場内の共培養セルシートは、MSCのみで構成される単一培養セルシートよりも速い増殖速度を示しています。また、共培養セルシートは、培養から2週間以内の単一栽培セルシートと比較して、血管内皮成長因子（VEGF）およびその受容体（VEGFR）を含む強力な血管新生マーカーを発現することを発見しました。システムは、内皮細胞系統への分化を誘発する可能性があります。この組み合わせた手法は、血管新生特性の強い発現と比較的短期間で、血管構造の細胞化と成熟を提供します。

Tissue engineering offers an alternate approach to providing vascular graft with potential to grow similar with native tissue by seeding autologous cells into biodegradable scaffold. In this study, we developed a combining technique by layering a sheet of cells onto a porous tubular scaffold. The cell sheet prepared from co-culturing human mesenchymal stem cells (hMSCs) and endothelial cells (ECs) were able to infiltrate through porous structure of the tubular poly (lactide-co-caprolactone) (PLCL) scaffold and further proliferated on luminal wall within a week of culture. Moreover, the co-culture cell sheet within the tubular scaffold has demonstrated a faster proliferation rate than the monoculture cell sheet composed of MSCs only. We also found that the co-culture cell sheet expressed a strong angiogenic marker, including vascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptor (VEGFR), as compared with the monoculture cell sheet within 2 weeks of culture, indicating that the co-culture system could induce differentiation into endothelial cell lineage. This combined technique would provide cellularization and maturation of vascular construct in relatively short period with a strong expression of angiogenic properties.