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International journal of legal medicine2020Jan01Vol.134issue(1)

死後GHB分析の課題:ストレージ条件と標本タイプは両方とも重要です

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文献タイプ:
  • Journal Article
概要
Abstract

背景:死後標本におけるガンマヒドロキシブチレート(GHB)の濃度の解釈のために、体内およびin vitroでの死後の発生による増加の可能性を考慮する必要があります。さまざまな保管条件と標本タイプの影響を調査しました。 方法と材料:大腿静脈血液(VB)、心血液(HB)、VB、尿(U)、脳脊髄液(CSF)、および硝子体ユーモア(VH)の血清(S)の死後GHB濃度は、ガスによって決定されました。誘導体化後のクロマトグラフィマス分析。4°Cまたは室温(RT)とフッ化ナトリウム(NAF)の添加など、さまざまな貯蔵条件を最大30日間の貯蔵中に比較しました。さらに、細菌のコロニー形成は、質量分析のフィンガープリントによって決定されました。 結果:外因性GHBの関与のない26の症例が調べられました。0日目のGHB濃度(標本による)は3.9-22.1 mg/L(VB)、6.6-33.3 mg/L(HB)、<0.5-18.1 mg/L(U)、1.1-10.4 mg/L(CSF)でした。および1.7-22.0 mg/L(VH)。4°Cでは、30日目に濃度が5.6-74.5 mg/L(VB)、4.6-76.5 mg/L(HB)、および<0.5-21.3 mg/L(U)に増加しました。RTでは、濃度が0.5-38.5 mg/L(VB)、1.2-94.6 mg/L(HB)、30日目に<0.5-37.5 mg/L(U)に上昇しました。CSFでは、RTでは増加して増加します〜<0.5-21.2 mg/Lを測定し、4°Cでは、減少が発生しました(<0.5-6.5 mg/L)。VHのGHB濃度は、両方の温度(1.2-20.9 mg/Lおよび<0.5-26.2 mg/L)で安定したままでした。NAFを使用したHBサンプルでのGHBの増加は、保存なしでそれよりも大幅に低かった。細菌のコロニー形成とGHB濃度の変化の程度との間に相関は見られませんでした。 結論:GHB濃度は、貯蔵時間、温度、個人間の違いに応じて、死後HB、VB、およびUサンプルで大幅に増加する可能性があります。CSF、VH、S、および/またはNAFの標本の結果は影響を受けません。

背景:死後標本におけるガンマヒドロキシブチレート(GHB)の濃度の解釈のために、体内およびin vitroでの死後の発生による増加の可能性を考慮する必要があります。さまざまな保管条件と標本タイプの影響を調査しました。 方法と材料:大腿静脈血液(VB)、心血液(HB)、VB、尿(U)、脳脊髄液(CSF)、および硝子体ユーモア(VH)の血清(S)の死後GHB濃度は、ガスによって決定されました。誘導体化後のクロマトグラフィマス分析。4°Cまたは室温(RT)とフッ化ナトリウム(NAF)の添加など、さまざまな貯蔵条件を最大30日間の貯蔵中に比較しました。さらに、細菌のコロニー形成は、質量分析のフィンガープリントによって決定されました。 結果:外因性GHBの関与のない26の症例が調べられました。0日目のGHB濃度(標本による)は3.9-22.1 mg/L(VB)、6.6-33.3 mg/L(HB)、<0.5-18.1 mg/L(U)、1.1-10.4 mg/L(CSF)でした。および1.7-22.0 mg/L(VH)。4°Cでは、30日目に濃度が5.6-74.5 mg/L(VB)、4.6-76.5 mg/L(HB)、および<0.5-21.3 mg/L(U)に増加しました。RTでは、濃度が0.5-38.5 mg/L(VB)、1.2-94.6 mg/L(HB)、30日目に<0.5-37.5 mg/L(U)に上昇しました。CSFでは、RTでは増加して増加します〜<0.5-21.2 mg/Lを測定し、4°Cでは、減少が発生しました(<0.5-6.5 mg/L)。VHのGHB濃度は、両方の温度(1.2-20.9 mg/Lおよび<0.5-26.2 mg/L)で安定したままでした。NAFを使用したHBサンプルでのGHBの増加は、保存なしでそれよりも大幅に低かった。細菌のコロニー形成とGHB濃度の変化の程度との間に相関は見られませんでした。 結論:GHB濃度は、貯蔵時間、温度、個人間の違いに応じて、死後HB、VB、およびUサンプルで大幅に増加する可能性があります。CSF、VH、S、および/またはNAFの標本の結果は影響を受けません。

BACKGROUND: For the interpretation of concentrations of gamma-hydroxybutyrate (GHB) in post-mortem specimens, a possible increase due to post-mortem generation in the body and in vitro has to be considered. The influence of different storage conditions and the specimen type was investigated. METHOD AND MATERIAL: Post-mortem GHB concentrations in femoral venous blood (VB), heart blood (HB), serum (S) from VB, urine (U), cerebrospinal fluid (CSF) and vitreous humour (VH) were determined by gas chromatography-mass spectrometry after derivatisation. Various storage conditions, that is 4 °C or room temperature (RT) and the addition of sodium fluoride (NaF), were compared during storage up to 30 days. Additionally, bacterial colonisation was determined by mass spectrometry fingerprinting. RESULTS: Twenty-six cases without involvement of exogenous GHB were examined. GHB concentrations (by specimen) at day 0 were 3.9-22.1 mg/L (VB), 6.6-33.3 mg/L (HB), < 0.5-18.1 mg/L (U), 1.1-10.4 mg/L (CSF) and 1.7-22.0 mg/L (VH). At 4 °C, concentrations increased at day 30 to 5.6-74.5 mg/L (VB), 4.6-76.5 mg/L (HB) and < 0.5-21.3 mg/L (U). At RT, concentrations rose to < 0.5-38.5 mg/L (VB), 1.2-94.6 mg/L (HB) and < 0.5-37.5 mg/L (U) at day 30. In CSF, at RT, an increase up to < 0.5-21.2 mg/L was measured, and at 4 °C, a decrease occurred (< 0.5-6.5 mg/L). GHB concentrations in VH remained stable at both temperatures (1.2-20.9 mg/L and < 0.5-26.2 mg/L). The increase of GHB in HB samples with NaF was significantly lower than that without preservation. No correlation was found between the bacterial colonisation and extent of GHB concentration changes. CONCLUSION: GHB concentrations can significantly increase in post-mortem HB, VB and U samples, depending on storage time, temperature and inter-individual differences. Results in CSF, VH, S and/or specimens with NaF are less affected.

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