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Ca2+/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼII(CAMKII)は、タンパク質ホスファターゼ1(I1PP1)の阻害剤1によって調節され、心血管恒常性を維持するために不可欠です。ただし、心筋細胞における低酸素レオキシゲン化(H/R)損傷に対するI1PP1の役割とメカニズムは依然として問題です。我々の研究では、新生児心筋細胞におけるアデノウイルス感染によるI1PP1過剰発現後、続いて4時間低酸素症と12時間の再酸素化、CamKIIδ代替スプライシングサブタイプ、ATP含有量、および乳酸脱水素酵素(LDH)の放出が決定されました。CAMKII活性は、THR17(P-PLB THR17)、CAMKIIリン酸化(P-CAMKII)、およびCAMKII酸化(OX-CAMKII)でのリンタンパク質リン酸化によって評価されました。反応性酸素種(ROS)、ミトコンドリア膜電位、ダイナミン関連タンパク質1(DRP1)、および視神経萎縮1(OPA1)発現を評価しました。私たちの研究では、I1PP1の過剰発現がCAMKIIδの代替スプライシング障害を減衰させることを確認しました。Thr17、p-Camkii、およびox-camkiiでのPLBリン酸化を抑制しました。細胞LDHリリースの減少。ATP含有量の増加。減衰ROS生産;ミトコンドリア膜電位の増加。DRP1発現の減少が減少したが、H/R後の心筋細胞でOPA1発現を増加させた。反対に、CAMKIIδ代替スプライシング障害、LDH放出、ATP減少、およびROS蓄積は、I1PP1ノックダウンによるH/R損傷の後に悪化しました。集合的に、I1PP1過剰発現CAMKIIδ代替スプライシングの修正障害、CAMKIIリン酸化、抑制されたCAMKII酸化、ROS産生の抑制、および心筋細胞H/R損傷の減衰。
Ca2+/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼII(CAMKII)は、タンパク質ホスファターゼ1(I1PP1)の阻害剤1によって調節され、心血管恒常性を維持するために不可欠です。ただし、心筋細胞における低酸素レオキシゲン化(H/R)損傷に対するI1PP1の役割とメカニズムは依然として問題です。我々の研究では、新生児心筋細胞におけるアデノウイルス感染によるI1PP1過剰発現後、続いて4時間低酸素症と12時間の再酸素化、CamKIIδ代替スプライシングサブタイプ、ATP含有量、および乳酸脱水素酵素(LDH)の放出が決定されました。CAMKII活性は、THR17(P-PLB THR17)、CAMKIIリン酸化(P-CAMKII)、およびCAMKII酸化(OX-CAMKII)でのリンタンパク質リン酸化によって評価されました。反応性酸素種(ROS)、ミトコンドリア膜電位、ダイナミン関連タンパク質1(DRP1)、および視神経萎縮1(OPA1)発現を評価しました。私たちの研究では、I1PP1の過剰発現がCAMKIIδの代替スプライシング障害を減衰させることを確認しました。Thr17、p-Camkii、およびox-camkiiでのPLBリン酸化を抑制しました。細胞LDHリリースの減少。ATP含有量の増加。減衰ROS生産;ミトコンドリア膜電位の増加。DRP1発現の減少が減少したが、H/R後の心筋細胞でOPA1発現を増加させた。反対に、CAMKIIδ代替スプライシング障害、LDH放出、ATP減少、およびROS蓄積は、I1PP1ノックダウンによるH/R損傷の後に悪化しました。集合的に、I1PP1過剰発現CAMKIIδ代替スプライシングの修正障害、CAMKIIリン酸化、抑制されたCAMKII酸化、ROS産生の抑制、および心筋細胞H/R損傷の減衰。
Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II (CaMKII), regulated by inhibitor 1 of protein phosphatase 1 (I1PP1), is vital for maintaining cardiovascular homeostasis. However, the role and mechanism of I1PP1 against hypoxia-reoxygenation (H/R) injury in cardiomyocytes remain a question. In our study, after I1PP1 overexpression by adenovirus infection in the neonatal cardiomyocytes followed by hypoxia for 4 h and reoxygenation for 12 h, the CaMKIIδ alternative splicing subtype, ATP content, and lactate dehydrogenase (LDH) release were determined. CaMKII activity was evaluated by phosphoprotein phosphorylation at Thr17 (p-PLB Thr17), CaMKII phosphorylation (p-CaMKII), and CaMKII oxidation (ox-CaMKII). Reactive oxygen species (ROS), mitochondrial membrane potential, dynamin-related protein 1 (DRP1), and optic atrophy 1 (OPA1) expressions were assessed. Our study verified that I1PP1 overexpression attenuated the CaMKIIδ alternative splicing disorder; suppressed PLB phosphorylation at Thr17, p-CaMKII, and ox-CaMKII; decreased cell LDH release; increased ATP content; attenuated ROS production; increased mitochondrial membrane potential; and decreased DRP1 expression but increased OPA1 expression in the cardiomyocytes after H/R. Contrarily, CaMKIIδ alternative splicing disorder, LDH release, ATP reduction, and ROS accumulation were aggravated after H/R injury with the I1PP1 knockdown. Collectively, I1PP1 overexpression corrected disorders of CaMKIIδ alternative splicing, inhibited CaMKII phosphorylation, repressed CaMKII oxidation, suppressed ROS production, and attenuated cardiomyocyte H/R injury.
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