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はじめに:現代の生物医学では、3D印刷がより広範囲に使用されています。問題の1つは、バイオプリント材料の適切な架橋方法を選択することです。現在使用されている技術の中で、物理的架橋(Ca2+およびSr2+など)と化学架橋 - UV光の架橋が最大の議論を引き起こすことを区別できます。UV放射は、主にUV-B領域ではなく、UV-AおよびUV-C領域でも(ある程度)DNAによって選択的に吸収されます。DNA興奮は、典型的な光生成物をもたらします。鎖切断の量は、博覧会の期間によって異なる場合があります。これは、放射線後に細胞がインキュベーションを受ける場合にも異なる場合があります。 目的:この研究の目的は、405 nmおよび365 nmの波長による照射の時間が、細胞株および微小型(膵島)のDNA損傷にどのように影響するかを示すことでした。 材料と方法:さまざまな波長の放射(405 nmおよび365 nm)によって引き起こされるDNA損傷の程度を彗星アッセイによって評価しました。このテストは、24時間のインキュベーション期間後に線維芽細胞、アルファ細胞、ベータ細胞、ブタ膵島で実施されました。放射線処理のないサンプルは、対照群として選択されました。結果分析は、損傷したDNAの細胞の割合と尾強度評価で構成されていました。 結果:テストされた期間(10〜300秒)に応じて、405 nm波長に曝露した後の膵島のDNA損傷の程度は2%〜6%で振動しました。ただし、365 nmの波長を使用して膵島を処理すると、最大50%の損傷が生じました。これは、405 nmの波長を使用すると、明らかに損傷が大幅に少ないことを示しています。テストされた細胞株についても同様の結果が得られました。 結論:405 nmとの架橋は、365 nm UV光と架橋するよりも膵島の方が優れています。
はじめに:現代の生物医学では、3D印刷がより広範囲に使用されています。問題の1つは、バイオプリント材料の適切な架橋方法を選択することです。現在使用されている技術の中で、物理的架橋(Ca2+およびSr2+など)と化学架橋 - UV光の架橋が最大の議論を引き起こすことを区別できます。UV放射は、主にUV-B領域ではなく、UV-AおよびUV-C領域でも(ある程度)DNAによって選択的に吸収されます。DNA興奮は、典型的な光生成物をもたらします。鎖切断の量は、博覧会の期間によって異なる場合があります。これは、放射線後に細胞がインキュベーションを受ける場合にも異なる場合があります。 目的:この研究の目的は、405 nmおよび365 nmの波長による照射の時間が、細胞株および微小型(膵島)のDNA損傷にどのように影響するかを示すことでした。 材料と方法:さまざまな波長の放射(405 nmおよび365 nm)によって引き起こされるDNA損傷の程度を彗星アッセイによって評価しました。このテストは、24時間のインキュベーション期間後に線維芽細胞、アルファ細胞、ベータ細胞、ブタ膵島で実施されました。放射線処理のないサンプルは、対照群として選択されました。結果分析は、損傷したDNAの細胞の割合と尾強度評価で構成されていました。 結果:テストされた期間(10〜300秒)に応じて、405 nm波長に曝露した後の膵島のDNA損傷の程度は2%〜6%で振動しました。ただし、365 nmの波長を使用して膵島を処理すると、最大50%の損傷が生じました。これは、405 nmの波長を使用すると、明らかに損傷が大幅に少ないことを示しています。テストされた細胞株についても同様の結果が得られました。 結論:405 nmとの架橋は、365 nm UV光と架橋するよりも膵島の方が優れています。
INTRODUCTION: 3D printing is being used more extensively in modern biomedicine. One of the problems is selecting a proper crosslinking method of bioprinted material. Amongst currently used techniques we can distinguish: physical crosslinking (e.g. Ca2+ and Sr2+) and chemical crosslinking-the UV light crosslinking causing the biggest discussion. UV radiation is selectively absorbed by DNA, mainly in the UV-B region but also (to some extent) in UV-A and UV-C regions. DNA excitement results in typical photoproducts. The amount of strand breaks may vary depending on the period of exposition, it can also differ when cells undergo incubation after radiation. AIM: The aim of this study was to show whether and how the time of irradiation with 405 nm and 365 nm wavelengths affect DNA damage in cell lines and micro-organs (pancreatic islets). MATERIALS AND METHODS: The degree of DNA damage caused by different wavelengths of radiation (405 nm and 365 nm) was evaluated by a comet assay. The test was performed on fibroblasts, alpha cells, beta cells and porcine pancreatic islets after 24 hours incubation period. Samples without radiation treatment were selected as a control group. Results analysis consisted of determining the percent of cells with damaged DNA and the tail intensity evaluation. RESULTS: The degree of DNA damage in pancreatic islets after exposure to 405 nm wavelength oscillated between 2% and 6% depending on the tested time period (10 - 300 seconds). However, treating islets using 365 nm wavelength resulted in damage up to 50%. This clearly shows significantly less damage when using 405 nm wavelength. Similar results were obtained for the tested cell lines. CONCLUSIONS: Crosslinking with 405 nm is better for pancreatic islets than crosslinking with 365 nm UV light.
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