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ヒト生殖器に特有の原生動物の寄生虫であるトリコモナス膣は、最も一般的な性感染性病原体の1つです。その病原性は、宿主上皮細胞の細胞毒性効果を引き起こす広範なプロテアーゼの発現と強く関連しています。特にL. gasseriのものを含む膣微生物叢関連乳酸菌は、T。gaginalisの病因に対抗する可能性がありますが、関係するメカニズムはまだ明確にされていません。T.膣株G3(TV G3)細胞毒性は、F-アクチン細胞骨格の細胞形態、細胞剥離、および蛍光標識、および付属局所レーザー走査型電子顕微鏡の電子顕微鏡による電子型顕微鏡によるvinculin-position焦点付着(FAS)の免疫標識を調べることにより評価されました。HeLa Cell Monolayers。TV G3生存率とHELA細胞に対する寄生虫の有害な効果に対するL. gasseri ATCC 9857およびKS 120.1の細菌細胞および分泌産物の阻害効果を調査しました。L. gasseri細胞が遅れたが、テレビG3誘導細胞剥離、F-アクチン細胞骨格の混乱、およびビンキュリン陽性焦点FAの消失を阻害しなかった。L. Gasseri KS 120.1分泌産物は、直接接触後に時間および濃度依存のTV G3寄生虫を殺すことにより、急速な寄生虫産物活性を有していました。上皮細胞にすでに関連するTV G3寄生虫を殺すことにより、分泌産物は寄生虫誘発細胞剥離を廃止しました。我々の発見は、膣微生物叢関連のL. gasseriが物理的障壁を作り出し、薬理型メカニズムを発揮してT. vaginalisの有害な細胞毒性効果に対抗することを示唆しています。
ヒト生殖器に特有の原生動物の寄生虫であるトリコモナス膣は、最も一般的な性感染性病原体の1つです。その病原性は、宿主上皮細胞の細胞毒性効果を引き起こす広範なプロテアーゼの発現と強く関連しています。特にL. gasseriのものを含む膣微生物叢関連乳酸菌は、T。gaginalisの病因に対抗する可能性がありますが、関係するメカニズムはまだ明確にされていません。T.膣株G3(TV G3)細胞毒性は、F-アクチン細胞骨格の細胞形態、細胞剥離、および蛍光標識、および付属局所レーザー走査型電子顕微鏡の電子顕微鏡による電子型顕微鏡によるvinculin-position焦点付着(FAS)の免疫標識を調べることにより評価されました。HeLa Cell Monolayers。TV G3生存率とHELA細胞に対する寄生虫の有害な効果に対するL. gasseri ATCC 9857およびKS 120.1の細菌細胞および分泌産物の阻害効果を調査しました。L. gasseri細胞が遅れたが、テレビG3誘導細胞剥離、F-アクチン細胞骨格の混乱、およびビンキュリン陽性焦点FAの消失を阻害しなかった。L. Gasseri KS 120.1分泌産物は、直接接触後に時間および濃度依存のTV G3寄生虫を殺すことにより、急速な寄生虫産物活性を有していました。上皮細胞にすでに関連するTV G3寄生虫を殺すことにより、分泌産物は寄生虫誘発細胞剥離を廃止しました。我々の発見は、膣微生物叢関連のL. gasseriが物理的障壁を作り出し、薬理型メカニズムを発揮してT. vaginalisの有害な細胞毒性効果に対抗することを示唆しています。
Trichomonas vaginalis, a protozoan parasite specific to the human genital tract, is one of the most common sexually transmitted pathogens. Its pathogenicity is strongly associated with its expression of a broad array of proteases triggering cytotoxic effects in host epithelial cells. Vaginal microbiota-associated Lactobacillus, including those of L. gasseri in particular, can counteract T. vaginalis pathogenesis, but the mechanisms involved have yet to be clarified. T. vaginalis strain G3 (Tv G3) cytotoxicity was assessed by examining cell morphology, cell detachment, and fluorescent labeling of the F-actin cytoskeleton and immunolabeling of vinculin-position focal adhesions (FAs) by confocal laser scanning electron microscopy on confluent cervicovaginal epithelial HeLa cell monolayers. The inhibitory effects of bacterial cells and secreted products of L. gasseri ATCC 9857 and KS 120.1 on the Tv G3 viability and parasite deleterious effects on HeLa cells were investigated. Pre-adhering L. gasseri cells delayed but did not inhibit Tv G3-induced cell detachment, F-actin cytoskeleton disorganization and the disappearance of vinculin-positive focal FAs. L. gasseri KS 120.1 secretion products had a rapid parasiticide activity by killing time- and concentration-dependent Tv G3 parasites after direct contact. By killing Tv G3 parasites already associated with the epithelial cells, secretion products have abolished parasite-induced cell detachment. Our findings suggest that vagina microbiota-associated L. gasseri creates a physical barrier and exerts pharmacological-type mechanisms to counteract the deleterious cytotoxic effects of T. vaginalis.
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