in vitroでのブタ繁殖菌のレチノイン酸誘発分化

精子形成は、精子幹細胞（SSC）を自己再生し、成熟精子に分化する精巣で発生する複雑な発達プロセスです。SSCの自己再生と分化の分子メカニズムは、マウスでよく研究されていますが、マウスとブタを含む家畜の間で異なる場合があります。これまでのところよく理解されてきたブタSSCの自己再生と分化の分子メカニズムに関する知識を得るために、ここでは、新生児ブタの精巣から繁栄した繁栄を濃縮し、細胞をレチノイン酸にさらしました。次に、RNAシーケンス分析によって明らかにされたように、レチノイン酸がブタの繁栄型分化を誘導する可能性があることを確認しました。また、レチノイン酸誘発性in vitroブタの精子分化とin vivoプロセスを比較し、レチノイン酸誘発性in vitroの精子分化を豚とマウスの間で比較しました。さらに、レチノイン酸誘導性の差次的に発現した長い非コーディングRNA（lncrNA）を分析し、豚特異的lncRNAであるlncRNA-106504875が、コア転写因子ZBTB16を標的とすることにより、ブタの精子剤増殖を正に調節したことを実証しました。まとめると、これらの結果は、ブタの精子分化におけるレチノイン酸の役割を解明するのに役立ち、それによってブタSSCの発達の根底にある分子メカニズムに関するさらなる知識に貢献し、長期的には長期的な培養と誘発された分化の最適化に貢献します。ブタSSCのシステム。

Spermatogenesis is an intricate developmental process occurring in testes by which spermatogonial stem cells (SSCs) self-renew and differentiate into mature sperm. The molecular mechanisms for SSC self-renewal and differentiation, while have been well studied in mice, may differ between mice and domestic animals including pigs. To gain knowledge about the molecular mechanisms for porcine SSC self-renewal and differentiation that have so far been poorly understood, here we isolated and enriched prospermatogonia from neonatal porcine testes, and exposed the cells to retinoic acid, a direct inducer for spermatogonial differentiation. We then identified that retinoic acid could induce porcine prospermatogonial differentiation, which was accompanied by a clear transcriptomic alteration, as revealed by the RNA-sequencing analysis. We also compared retinoic acid-induced in vitro porcine spermatogonial differentiation with the in vivo process, and compared retinoic acid-induced in vitro spermatogonial differentiation between pigs and mice. Furthermore, we analyzed retinoic acid-induced differentially expressed long non-coding RNAs (lncRNAs), and demonstrated that a pig-specific lncRNA, lncRNA-106504875, positively regulated porcine spermatogonial proliferation by targeting the core transcription factor ZBTB16. Taken together, these results would help to elucidate the roles of retinoic acid in porcine spermatogonial differentiation, thereby contributing to further knowledge about the molecular mechanisms underlying porcine SSC development and, in the long run, to optimization of both long-term culture and induced differentiation systems for porcine SSCs.