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スクリーンプリント炭素電極(SPE)のDNA/AUPT/P-L-METコーティングに基づく新しい単純な電気化学DNAバイオセンサーの準備と、がん治療剤、イマチニブ(IMA)およびイマチニブ(IMA)およびエルロチニブ(ERL)。Poly-L-メチオニン(P-L-MET)、金、およびプラチナナノ粒子(AUPT)は、L-MET、HAUCL4、およびH2PTCL6を含む溶液からSPEにワンステップの電極沈着により正常にコーティングされました。DNAの固定化は、修飾された電極の表面にドロップキャストすることによって達成されました。環状ボルタンメトリー(CV)、電気化学インピーダンス分光法(EIS)、野外放出走査型電子顕微鏡(FE-SEM)、エネルギー分散型X線分光法(EDX)、および原子力顕微鏡(AFM)を使用して、形態を調査するために使用されました。構造、およびセンサーの電気化学パフォーマンス。コーティングおよびDNA固定化プロセスに影響を与える実験的要因が最適化されました。グアニン(G)およびアデニン(A)DS-DNAの酸化に由来するピーク電流を、濃度範囲2.33-80 nmおよび0.032-1.0 nmのIMAとERLを定量化するシグナルとして使用して、LODSは0.18 nmおよび0.009 nmのLODSを使用します。、 それぞれ。開発されたバイオセンサーは、ヒト血清および医薬品サンプルのIMAとERLを決定するのに適していました。
スクリーンプリント炭素電極(SPE)のDNA/AUPT/P-L-METコーティングに基づく新しい単純な電気化学DNAバイオセンサーの準備と、がん治療剤、イマチニブ(IMA)およびイマチニブ(IMA)およびエルロチニブ(ERL)。Poly-L-メチオニン(P-L-MET)、金、およびプラチナナノ粒子(AUPT)は、L-MET、HAUCL4、およびH2PTCL6を含む溶液からSPEにワンステップの電極沈着により正常にコーティングされました。DNAの固定化は、修飾された電極の表面にドロップキャストすることによって達成されました。環状ボルタンメトリー(CV)、電気化学インピーダンス分光法(EIS)、野外放出走査型電子顕微鏡(FE-SEM)、エネルギー分散型X線分光法(EDX)、および原子力顕微鏡(AFM)を使用して、形態を調査するために使用されました。構造、およびセンサーの電気化学パフォーマンス。コーティングおよびDNA固定化プロセスに影響を与える実験的要因が最適化されました。グアニン(G)およびアデニン(A)DS-DNAの酸化に由来するピーク電流を、濃度範囲2.33-80 nmおよび0.032-1.0 nmのIMAとERLを定量化するシグナルとして使用して、LODSは0.18 nmおよび0.009 nmのLODSを使用します。、 それぞれ。開発されたバイオセンサーは、ヒト血清および医薬品サンプルのIMAとERLを決定するのに適していました。
We report on the preparation of a new and simple electrochemical DNA biosensor based on DNA/AuPt/p-L-Met coating on a screen-printed carbon electrode (SPE) and its use in the determination of the cancer therapy agents, Imatinib (IMA) and Erlotinib (ERL). Poly-l-methionine (p-L-Met), gold, and platinum nanoparticles (AuPt) were successfully coated by one-step electrodeposition onto the SPE from a solution containing L-Met, HAuCl4, and H2PtCl6. The immobilization of DNA was achieved by drop-casting on the surface of the modified electrode. Cyclic Voltammetry (CV), Electrochemical Impedance Spectroscopy (EIS), Field-Emission Scanning Electron Microscopy (FE-SEM), Energy-Dispersive X-ray Spectroscopy (EDX), and Atomic Force Microscopy (AFM) were used to investigate the morphology, the structure, and the electrochemical performance of the sensor. Experimental factors influencing the coating and DNA immobilization processes were optimized. The peak currents originating from guanine (G) and adenine (A) oxidation of ds-DNA were used as signals to quantify IMA and ERL in the concentration range 2.33-80 nM and 0.032-1.0 nM with the LODs of 0.18 nM and 0.009 nM, respectively. The biosensor developed was suitable for determining IMA and ERL in human serum and pharmaceutical samples.
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