Loading...
Animal reproduction20240101Vol.21issue(1)

金魚(Carassius auratus)から成体共通のcar(Cyprinus carpio)への時間効率の高い生殖細胞移植

,
,
,
,
,
,
,
,
,
文献タイプ:
  • Journal Article
概要
Abstract

魚への生殖細胞移植は、水産養殖においてより広範な適用を伴い、絶滅危andした貴重な遺伝的資源を保存する代理血管系の親にとって有望な技術です。本明細書では、性的成熟した金魚(C. auratus)男性からの生殖細胞の毛細管内異系移植の確立を、熱化学的治療で細胞性化された普通のcar(carpio)雄への腫瘍内移植について説明します(35で40 mg/kgでブスルファンの2回のブスルファンの投与°C)。レシピエント精巣におけるドナー生殖細胞の存在と発達を分析するために、移植前にドナー生殖細胞を蛍光細胞膜色素であるPKH26で標識しました。我々の結果は、熱化学的治療が効果的な精子形成抑制を引き起こし、生殖細胞喪失を顕著に引き起こしたことを実証した。さらに、移植された精子細胞は、胚細胞移植後8週間以内に、レシピエントの精巣に定着し、精子形成を再開し、精子形成を生成することができました。これらの発見は、レシピエントの精巣が、関連種からのドナー精子体の生存、植民地化、増殖、および分化に適した条件を提供したことを示唆しました。この研究は、レシピエントの精巣が、短い時間枠で精子を形成することができた異種供与剤生殖細胞を受け入れてサポートするために高度な可塑性を示したことを示しました。このアプローチは、動物の繁殖補助、バイオテクノロジー、保全、および貴重な遺伝資源と絶滅危ed種の魚種の生産に大きな意味を持ちます。

魚への生殖細胞移植は、水産養殖においてより広範な適用を伴い、絶滅危andした貴重な遺伝的資源を保存する代理血管系の親にとって有望な技術です。本明細書では、性的成熟した金魚(C. auratus)男性からの生殖細胞の毛細管内異系移植の確立を、熱化学的治療で細胞性化された普通のcar(carpio)雄への腫瘍内移植について説明します(35で40 mg/kgでブスルファンの2回のブスルファンの投与°C)。レシピエント精巣におけるドナー生殖細胞の存在と発達を分析するために、移植前にドナー生殖細胞を蛍光細胞膜色素であるPKH26で標識しました。我々の結果は、熱化学的治療が効果的な精子形成抑制を引き起こし、生殖細胞喪失を顕著に引き起こしたことを実証した。さらに、移植された精子細胞は、胚細胞移植後8週間以内に、レシピエントの精巣に定着し、精子形成を再開し、精子形成を生成することができました。これらの発見は、レシピエントの精巣が、関連種からのドナー精子体の生存、植民地化、増殖、および分化に適した条件を提供したことを示唆しました。この研究は、レシピエントの精巣が、短い時間枠で精子を形成することができた異種供与剤生殖細胞を受け入れてサポートするために高度な可塑性を示したことを示しました。このアプローチは、動物の繁殖補助、バイオテクノロジー、保全、および貴重な遺伝資源と絶滅危ed種の魚種の生産に大きな意味を持ちます。

Germ cell transplantation in fish is a promising technique for surrogate broodstock parents with broader application in aquaculture and conserving endangered and valuable genetic resources. Herein, we describe the establishment of an intrapapillary xenogeneic transplant of germ cells from sexually mature goldfish (C. auratus) males into common carp (C. carpio) males cytoablated with a thermochemical treatment (two doses of busulfan at 40 mg/kg at 35°C). To analyze the presence and development of donor germ cells in recipient testes, donor germ cells were labeled with PKH26, a fluorescent cell membrane dye, before transplantation. Our results demonstrated that thermochemical treatment caused effective spermatogenesis suppression and pronounced germ cell loss. Moreover, transplanted spermatogonial cells were able to colonize the recipients' testes, resume spermatogenesis, and generate spermatozoa within eight weeks after germ cell transplantation. These findings suggested that recipient testes provided suitable conditions for the survival, colonization, proliferation, and differentiation of donor spermatogonia from a related species. This study indicated that recipients' testes exhibited a high degree of plasticity to accept and support xenogeneic donor germ cells, which were able to form sperm in a short time frame. This approach has significant implications for assisted animal reproduction, biotechnology, conservation, and the production of valuable genetic resources and endangered fish species.

医師のための臨床サポートサービス

ヒポクラ x マイナビのご紹介

無料会員登録していただくと、さらに便利で効率的な検索が可能になります。

Translated by Google