シロイヌナズナのトランスジェンの過剰発現のための異なる構成的および誘導性プロモーターの比較thaliana

臓器の特異性と異なる構成（CAMV-35S、CAMV-35Somega、シロイヌナズナユビキチンUBQ1、および大麦葉のシオニンBTH6プロモーター）と1つの誘導性プロモーター（大豆熱ショックプロモーターGMHSP17.3）の安定したアラビアラデプス型タリアナナの強度を比較しました。植物。この目的のために、さまざまなプロモーターを備えた一連の植物発現ベクターを構築しました。UIDAレポーター遺伝子を使用して、CAMV-35Sプロモーターが、プロモーターの臓器特異性を変更せずに翻訳エンハンサー（TMVオメガ要素）を追加することにより2〜3倍増加した最も高い発現レベルを持っていることを示すことができます。オオムギの葉のチオニンプロモーターは、ほとんどの系統でほとんど不活性でしたが、ユビキチンプロモーターは中間強度を示しました。熱ショックプロモーターは最大18倍まで誘導できましたが、絶対レベルはユビキチンプロモーターの場合よりも低かった。さまざまな臓器と発達段階の決定的な定量的結果は、プロモーターコンストラクトごとの24の安定的に形質転換された系統の分析によって得られました。

We compared the organ specificity and the strength of different constitutive (CaMV-35S, CaMV-35Somega, Arabidopsis ubiquitin UBQ1, and barley leaf thionin BTH6 promoter) and one inducible promoter (soybean heat-shock promoter Gmhsp17.3) in stably transformed Arabidopsis thaliana plants. For this purpose we constructed a set of plant expression vectors equipped with the different promoters. Using the uidA reporter gene we could show that the CaMV-35S promoter has the highest expression level which was enhanced two- to threefold by the addition of a translational enhancer (TMV omega element) without altering the organ specificity of the promoter. The barley leaf thionin promoter was almost inactive in the majority of lines whereas the ubiquitin promoter exhibited an intermediate strength. The heat-shock promoter was inducible up to 18-fold but absolute levels were lower than in the case of the ubiquitin promoter. Conclusive quantitative results for different organs and developmental stages were obtained by the analysis of 24 stably transformed lines per promoter construct.