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Journal of lipid research1996May01Vol.37issue(5)

眼の非常に血管化された構造におけるリポタンパク質リパーゼ

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PMID:8725155DOI:
文献タイプ:
  • Journal Article
  • Research Support, Non-U.S. Gov't
概要
Abstract

眼組織は、リポタンパク質からの脂肪酸の取り込みメカニズムを必要とする脂質の離職と代謝に大きく依存しています。さまざまな眼領域での血漿トリグリセリドの加水分解を触媒するリポタンパク質リパーゼ(LPL)の活性と発現を研究しました。人間と牛の目を解剖し、LPL活性、mRNA、および免疫反応性についてさまざまな特殊な解剖学的領域をアッセイしました。LPL活性のさまざまなレベルは、人間と牛の目のすべての構造で検出されました。LPLの活性は、硝子体、レンズ、角膜などの血管の眼構造よりも毛様体、虹彩、網膜などの血管新生構造ではるかに高かった。人間と牛の両方の目で、毛様体は最高のLPL脂肪分解活性を含んでいた。LPL mRNAは、逆転写に続いて、人間の眼のすべての領域でポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)が検出されました。RT-PCR分析により、ウシの眼が毛様体および虹彩に高レベルのLPL mRNAを含むことが示されましたが、網膜、視神経、およびレンズではより低いレベルが見つかりましたが、LPL mRNAは角膜には見られませんでした。ウシの眼で得られたRT-PCRデータは、ノーザンブロット実験によって得られた結果に同意し、虹彩と繊毛体のLPL mRNAの高レベルを確認します。ヒトの眼サンプルで行われた免疫蛍光実験は、LPLタンパク質が大部分がチョロイド、絨毛毛毛室、および毛様体、虹彩、視神経、網膜の血管に分布していることを示しています。本研究は、活性LPLタンパク質が眼のいくつかの特殊な領域の微小血管間で合成、分泌、および位置することを示しており、LPLが眼組織による脂肪酸の取り込みに関与している可能性があることを示唆しています。

眼組織は、リポタンパク質からの脂肪酸の取り込みメカニズムを必要とする脂質の離職と代謝に大きく依存しています。さまざまな眼領域での血漿トリグリセリドの加水分解を触媒するリポタンパク質リパーゼ(LPL)の活性と発現を研究しました。人間と牛の目を解剖し、LPL活性、mRNA、および免疫反応性についてさまざまな特殊な解剖学的領域をアッセイしました。LPL活性のさまざまなレベルは、人間と牛の目のすべての構造で検出されました。LPLの活性は、硝子体、レンズ、角膜などの血管の眼構造よりも毛様体、虹彩、網膜などの血管新生構造ではるかに高かった。人間と牛の両方の目で、毛様体は最高のLPL脂肪分解活性を含んでいた。LPL mRNAは、逆転写に続いて、人間の眼のすべての領域でポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)が検出されました。RT-PCR分析により、ウシの眼が毛様体および虹彩に高レベルのLPL mRNAを含むことが示されましたが、網膜、視神経、およびレンズではより低いレベルが見つかりましたが、LPL mRNAは角膜には見られませんでした。ウシの眼で得られたRT-PCRデータは、ノーザンブロット実験によって得られた結果に同意し、虹彩と繊毛体のLPL mRNAの高レベルを確認します。ヒトの眼サンプルで行われた免疫蛍光実験は、LPLタンパク質が大部分がチョロイド、絨毛毛毛室、および毛様体、虹彩、視神経、網膜の血管に分布していることを示しています。本研究は、活性LPLタンパク質が眼のいくつかの特殊な領域の微小血管間で合成、分泌、および位置することを示しており、LPLが眼組織による脂肪酸の取り込みに関与している可能性があることを示唆しています。

Ocular tissues are highly dependent on lipid turnover and metabolism, which requires an uptake mechanism for fatty acids from lipoproteins. We studied the activity and expression of lipoprotein lipase (LPL), which catalyzes the hydrolysis of plasma triglycerides, in different ocular regions. Human and bovine eyes were dissected and various specialized anatomical areas were assayed for LPL activity, mRNA, and immunoreactivity. Variable levels of LPL activity were detected in all structures in human and bovine eyes. LPL activity was much higher in vascularized structures, such as ciliary body, iris, and retina than in avascular eye structures, such as vitreous body, lens, and cornea. In both human and bovine eyes, ciliary body contained the highest LPL lipolytic activity. LPL mRNA was detected by reverse transcription followed by polymerase chain reaction (RT-PCR) in all regions of human eyes. By RT-PCR analysis it was shown that bovine eyes contained high levels of LPL mRNA in ciliary body and iris, lower levels were found in retina, optic nerve, and lens, whereas no LPL mRNA could be found in bovine cornea. RT-PCR data, obtained in bovine eyes, agree with the results obtained by Northern blot experiments, confirming the high levels of LPL mRNA in iris and ciliary body. Immunofluorescence experiments performed on human eye samples indicated that the LPL protein is mostly distributed on the choroides, the choriocapillaris, and on the vessels of ciliary body, iris, optic nerve, and retina. The present study demonstrates that active LPL protein is synthesized, secreted, and located among microvessels in several specialized regions of the eye, and suggests that LPL could be involved in the uptake of fatty acids by the ocular tissues.

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