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CD34+細胞の迅速かつ効率的な精製を実現するために、ナイロン繊維シリンジ(NF-S)を考案し、それを操作して正常なヒト血液細胞(MN細胞)から接着細胞を枯渇させました。NF-Sで処理された細胞は、CD34モノクローナル抗体、免疫磁気ミクロスフェア、キモパペイン処理を使用して、ミクロスフェアを分離するCD34+画分としてさらに精製しました。定常状態のヒト末梢血細胞を24度CでNF-Sで5分間処理した場合、単球(CD14 +細胞)の頻度は22.0 +/- 5.2%から2.5 +/- 0.4%に大幅に減少し、CD34+細胞の73%の回収。その後の免疫磁気陽性選択は、86 +/- 23%の収率で91 +/- 8%純粋なCD34 +細胞の準備を達成しました。CD34 +細胞の全体的な収量は44 +/- 11%であり、すべての手順に必要な時間は5時間でした。初期細胞集団におけるCD14+細胞の頻度と最終準備でのCD34+細胞の純度の間には、緊密で逆相関がありました(p <0.0001)。90%を超える純粋なCD34+細胞の製剤を達成するためのCD14+細胞の推奨頻度は4.4%未満でした。NF-Sと免疫磁気ミクロスフェアを組み合わせると、定常状態のCD34+細胞の効率的なベンチトップ分離は、どの実験室でも行うことができ、蛍光活性化細胞ソルティングは必要ありません。
CD34+細胞の迅速かつ効率的な精製を実現するために、ナイロン繊維シリンジ(NF-S)を考案し、それを操作して正常なヒト血液細胞(MN細胞)から接着細胞を枯渇させました。NF-Sで処理された細胞は、CD34モノクローナル抗体、免疫磁気ミクロスフェア、キモパペイン処理を使用して、ミクロスフェアを分離するCD34+画分としてさらに精製しました。定常状態のヒト末梢血細胞を24度CでNF-Sで5分間処理した場合、単球(CD14 +細胞)の頻度は22.0 +/- 5.2%から2.5 +/- 0.4%に大幅に減少し、CD34+細胞の73%の回収。その後の免疫磁気陽性選択は、86 +/- 23%の収率で91 +/- 8%純粋なCD34 +細胞の準備を達成しました。CD34 +細胞の全体的な収量は44 +/- 11%であり、すべての手順に必要な時間は5時間でした。初期細胞集団におけるCD14+細胞の頻度と最終準備でのCD34+細胞の純度の間には、緊密で逆相関がありました(p <0.0001)。90%を超える純粋なCD34+細胞の製剤を達成するためのCD14+細胞の推奨頻度は4.4%未満でした。NF-Sと免疫磁気ミクロスフェアを組み合わせると、定常状態のCD34+細胞の効率的なベンチトップ分離は、どの実験室でも行うことができ、蛍光活性化細胞ソルティングは必要ありません。
To achieve a rapid and an efficient purification of CD34+ cells, we devised a nylon-fiber syringe (NF-S) and we manipulated it to deplete adherent cells from normal human blood mononuclear cells (MN cells). The cells processed by NF-S were further purified as the CD34+ fraction, using CD34 monoclonal antibody, immunomagnetic microspheres and chymopapain treatment to detach the microspheres. When steady-state human peripheral blood MN cells were processed by NF-S at 24 degrees C for 5 min, the frequency of monocytes (CD14+ cells) significantly decreased from 22.0 +/- 5.2% to 2.5 +/- 0.4%, with a 73% recovery of CD34+ cells. The subsequent immunomagnetic positive selection achieved preparations of 91 +/- 8% pure CD34+ cells with a 86 +/- 23% yield. The overall yield of CD34+ cells was 44 +/- 11%, and the time required for all procedures was 5 h. There was a tight and an inverse correlation (P < 0.0001) between the frequency of CD14+ cells in the initial cell population and the purity of CD34+ cells in the final preparation. A recommended frequency of CD14+ cells for achieving preparations of over 90% pure CD34+ cells was less than 4.4%. When combining NF-S and immunomagnetic microspheres, efficient bench-top separation of CD34+ cells in steady-state peripheral blood can be done in any laboratory, and fluorescence-activated cell-sorting is not required.
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