メンスチット酵母の比較抗真菌剤パネルと全国臨床臨床研究所標準委員会M27-A共通および新興のカンジダSPP、クリプトコッカスSPP、およびその他の酵母および酵母のような生物の臨床分離株をテストするための参照法との多施設比較

全国臨床検査標準委員会 (NCCLS) の標準ガイドラインは、一般的なカンジダ属菌の抗真菌感受性検査に利用できます。しかし、NCCLS 法は臨床検査室で使用するのに最も効率的で便利な手順ではない可能性があります。アムホテリシン B、フルコナゾール、フルシトシン、イトラコナゾール、およびケトコナゾールの MIC は、商業的に調製された Sensititre YeastOne Colorimetric Antifungal Panel と、Blastoschizomyces capitatus を含む酵母および酵母様微生物の 1,176 臨床分離株に対する NCCLS M27-A ブロス微量希釈法によって測定されました。クリプトコッカス属、カンジダの 14 種の一般種および新興種、ハンセヌラ アノマラ、ロドトルラ属、サッカロミセス セレビシエ、スポロボロミセス サルモニカラー、およびトリコスポロン ベージュリー。アムホテリシン B の比色 MIC は最初の青色のウェル (増殖なし) に対応し、他の薬剤の MIC は最初の紫または青色のウェルに対応しました。2 つの方法による MIC ペアの 3 つの比較を評価して、一致率を取得しました: 24 時間および 48 時間の MIC、および 24 時間の比色 MIC 対 48 時間の参照 MIC。YeastOne パネルの最高のパフォーマンスは、C. albicans (87 ～ 90%) を除く、テストしたすべての種でアゾールおよびフルシトシンを使用した 24 時間 MIC (92 ～ 100%) でした。アムホテリシン B については、試験した種のほとんどで、メソッド間で最もよく一致したのは 48 時間の MIC ペア (92 ～ 99%) でした。例外は、C. neoformans の分離株 (76%) でした。これらのデータは、臨床検査室での使用における YeastOne パネルの潜在的な価値を示唆しています。

National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) standard guidelines are available for the antifungal susceptibility testing of common Candida spp. and Cryptococcus neoformans, but NCCLS methods may not be the most efficient and convenient procedures for use in the clinical laboratory. MICs of amphotericin B, fluconazole, flucytosine, itraconazole, and ketoconazole were determined by the commercially prepared Sensititre YeastOne Colorimetric Antifungal Panel and by the NCCLS M27-A broth microdilution method for 1,176 clinical isolates of yeasts and yeast-like organisms, including Blastoschizomyces capitatus, Cryptococcus spp., 14 common and emerging species of Candida, Hansenula anomala, Rhodotorula spp., Saccharomyces cerevisiae, Sporobolomyces salmonicolor, and Trichosporon beigelii. Colorimetric MICs of amphotericin B corresponded to the first blue well (no growth), and MICs of the other agents corresponded to the first purple or blue well. Three comparisons of MIC pairs by the two methods were evaluated to obtain percentages of agreement: 24- and 48-h MICs and 24-h colorimetric versus 48-h reference MICs. The best performance of the YeastOne panel was with 24-h MICs (92 to 100%) with the azoles and flucytosine for all the species tested, with the exception of C. albicans (87 to 90%). For amphotericin B, the best agreement between the methods was with 48-h MIC pairs (92 to 99%) for most of the species tested. The exception was for isolates of C. neoformans (76%). These data suggest the potential value of the YeastOne panel for use in the clinical laboratory.